2. 北京城市排水集团有限公司, 北京 100022
2. Beijing Drainage Group Co., Ltd., Beijing 100022, China
目前大多数污水处理厂采用活性污泥法处理工艺[1], 随着我国污水排放标准不断提高, 二级出水TN浓度难以达到要求[2, 3], 特别是冬季低温条件下细菌的生物活性较差, 造成出水的TN较高, 因此开展深度脱氮处理技术的研究具有重要意义[4].微生物反硝化作用是脱氮的主要途径, 目前反硝化生物滤池[5~7]因占地面积小、操作流程简单等优点而被广泛地应用到二级出水的深度处理中, 其较为常见的工艺形式有曝气生物滤池[8]、反硝化生物滤池[9]等, 虽然出水TN得到有效控制, 但其本身也存在着运行不稳定、易堵塞[10~12]和反冲洗用水量过大等问题.
微生物固定化技术[13~15]作为现代生物工程中一项新兴技术, 在强化生物处理工艺方面有着显著的效果, 自20世纪70年代起, 固定化技术就已在水处理行业开始应用.Chen等[16]将磷酸化PVA包裹反硝化污泥用于废水脱氮, 其实验原水为人工配水, 针对市政污水复杂水质条件的脱氮效果并未作研究.王静萱等[17]以聚乙二醇为载体制作出包埋反硝化颗粒, 研究不同工况条件对包埋固定化颗粒深度脱氮的影响, 但其实验规模较小, 同时对运行过程中微生物在填料上变化规律未作研究.Rezaee等[18]将反硝化细菌固定在微生物纤维素上, 在较高硝酸盐浓度(200mg·L-1)下表现出良好的脱氮效果, 但在低硝酸盐浓度下效果并不理想.Wang等[19]以聚乙烯醇-海藻酸钠-粉末活性炭为固定化剂, 制作的固定化球粒在间歇运行条件下表现出较强的反硝化能力, 但连续流状态下效果不佳.
本实验利用课题组所建立的细菌包埋技术[20], 对驯化成熟的高效反硝化细菌[21]进行包埋固定化, 将制作完成的填料应用于北京某城市污水处理厂二沉池出水的深度脱氮研究, 以期为该处理工艺的工程化应用提供了依据.
1 材料与方法 1.1 实验装置和包埋填料的制备如图 1所示, 反应装置系统(DN池)主体为200 L有机玻璃柱, 直径为0.4 m, 高1.6 m.采用上向流连续进水, 进水管路设静态混合器, 实现原水和外加碳源充分混合, 同时设转子流量计, 指示进水流量变化.设加药泵一台, 用于投加碳源, 系统底部设有反冲洗管路.
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1.二级出水水箱;2.进水流量泵;3.进水阀门;4.乙酸钠溶液箱;5.进乙酸钠流量泵;6.进乙酸钠阀门;7.反冲洗阀门;8.反冲洗管路;9.流量计;10.静态混合器;11.进水取样点;12.阀门;13.有机玻璃柱;14.出水取样点;15.出水管路 图 1 包埋反硝化填料深度脱氮反应器(DN池) Fig. 1 Deep denitrification reactor with embedded denitrification filler |
包埋反硝化填料制作方法如下:将驯化成熟的高效反硝化细菌[比反硝化速率58 mg·(g·h)-1]离心浓缩至含水率为85%, 将其与质量分数为15%的PVA凝胶混合成包埋液, 将包埋液均匀涂装在圆柱形条状载体上, 在过饱和的硼酸溶液中交联, 最后切成1 cm长度的筒状填料, 分装于悬浮填料球中, 如图 1中放大的部分所示.
1.2 实验水质与分析方法本实验在北京某城市污水处理厂进行, 原水为该处理厂A2O工艺二沉池出水, 通过人工投加乙酸钠补充反硝化所需的碳源, 通过一年的水质检测, 其主要进水指标如表 1所示.
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表 1 进水水质 Table 1 Quality of influent water |
依据标准分析法[22]测定NH4+-N、NO2--N、NO3--N和COD浓度, 其中NH4+-N、NO2--N和NO3--N分别采用纳氏试剂光度法、N-(1-萘基)-乙二胺光度法和紫外分光光度法(UV-1600PC, MAPADA), COD采用连华科技COD快速测定仪测定.TN值利用MultiN/C3100TOC/TN仪测定, pH值利用上海三信PHS-3C型pH计测定, 温度由水银温度计测定.
1.3 DN池的启动及稳定运行本实验分为两部分:D1部分研究包埋反硝化填料对二级出水的适应性及其在不同HRT条件下对TN去除效果.由于二级出水中有效COD浓度较低, 无法满足填料进行反硝化所需的碳源, 故采用人工投加乙酸钠的方式补充碳源.将包埋制作完成的填料置于直径80 mm的孔状球中, 填充于DN池, 填充率为10%, HRT为1 h, pH为7.04~7.18, 进水温度在24℃±1℃, 对反应器进行驯化启动.DN池成功启动后, 以出水TN < 5mg·L-1为控制标准, 进一步对比不同HRT条件下, 包埋填料对TN的去除效果, 确定长期稳定运行的适宜HRT.
D2阶段DN池填充率为10%, 进水量为7.2 m3·d-1, HRT为30 min, 连续稳定运行1 a, 进水温度变化范围为14~26℃, 研究其长期运行的稳定性以及对四季自然温度变化的适应性.
1.4 低C/N条件下包埋反硝化填料性能研究污水厂二级出水中含有40 mg·L-1左右的COD, 其可生化性较差, 深度脱氮过程中利用率较低, 若提高该部分COD的利用率, 可有效减少外加碳源的投加量.DN池成功启动后, 在不外加碳源的条件下, 连续运行25 d, 研究包埋反硝化填料对二级出水中COD的最大利用率.
1.5 微生物群落结构变化 1.5.1 宏基因组测序分析分别取DN池运行前包埋填料样品Y1和长期稳定运行结束后的填料样品ZYK-1, 通过高通量测序, 对比微生物群落结构变化, 研究运行过程中反硝化细菌在填料上的生长繁殖.高通量测序利用OMEGA试剂盒从样本中提取DNA, 对细菌16S rRNA V3-V4区基因进行PCR扩增测序, 引物设计为V3~V4通用引物:341F引物(CCCTACACGA CGCTCTTCCGATCTG)和805R引物(GACTGGAGTTCCTTGGCACCCGAG AATTCCA), 通过Illumina HiSeq2500 PE250平台进行高通量测序, 利用MEGAN软件进行环境微生物16S分析, 可分别得到样本对应的优质序列, 将各序列分成不同的聚类操作分类单元(OTUs), 最后对OTUs结果进行分析计算, 该工作由上海生工生物工程(上海)有限公司完成
1.5.2 绝对荧光定量qPCR检测分析分别对样品Y1和ZYK-1进行绝对荧光定量qPCR检测, 测定反硝化功能基因的数量, qPCR检测设计引物序列为nirS-1F[CCTA(C/T)TGGCCGCC(A/G)CA(A/G)T]和nirS-6R[CGTTGAACTT(A/G)CCGGT], 使用生工质粒提取试剂盒B518191 SanPrep提取质粒, 构建好的质粒经测序鉴定无误后用微量分光光度计测定质粒D260的值, 通过公式换算成拷贝数(copies·mg-1).荧光定量qPCR检测工作在生工生物工程(上海)有限公司完成.
2 结果与讨论 2.1 DN池的驯化启动如图 2所示, 从第8 d开始, 反应器出水TN开始稳定在5mg·L-1以下, 且随进水TN的变化, 出水TN浓度未见明显波动, 此时进水C/N为4.12, 包埋反硝化填料对二级出水表现出了良好的适应性, 经过7 d的运行DN池即可成功启动.
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图 2 反硝化填料对二级出水的适应性研究 Fig. 2 Study of adaptability of denitrifying filler to secondary effluent |
在出水TN稳定达标的前提下, HRT越小则反应器的日处理能力越强, 实验对比了50、40、30和20 min条件下包埋反硝化填料对TN的去除效果.从图 3可看出, 当HRT由60 min降至30 min的过程中, 反应器出水TN仍能保持在5 mg·L-1以下, 分别用时5、9和12 d.当HRT为20 min时, 填料对TN的去除效果较差, 出水TN在9.0mg·L-1左右.这可能由于反应时间较短, 水流对填料的冲击负荷较大, 使其活性受到影响, 由此确定30 min为DN池稳定运行的适宜HRT.这表明包埋填料具备一定的耐水流冲击负荷能力, 可在较短HRT条件下, 实现TN的稳定去除.
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图 3 包埋反硝化填料在不同HRT条件下TN去除效果 Fig. 3 TN removal by embedded denitrification filler under different HRT |
从图 4可看出, 随DN池运行, 包埋反硝化填料对二级出水中生化性较差的COD利用率在不断提高, 最高可达到67.5%, 高于一般生物滤池的利用率[23], 这表明包埋反硝化填料可有效利用二级出水中生化性较差的COD, 从而减少深度脱氮过程中碳源的投加量, 出水的COD可降至15 mg·L-1, 这低于《北京市地方水污染物综合排放标准》(DB 11/307-2013)中的A类标准(COD < 20 mg·L-1).
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图 4 包埋反硝化填料对二级出水COD利用率变化分析 Fig. 4 Analysis of change of COD utilization rate of secondary effluent by embedding denitrification |
二级出水带有絮状杂质, 随实验进行填料表面会出现杂质的积累, 影响出水效果, 当系统出水TN超过5mg·L-1时, 需对系统进行反冲洗.通常普通滤池的冲洗强度和时间是通过膨胀率和反冲洗效果两方面来确定, 但DN池构造有别于普通滤池, 反冲洗时间和强度会影响填料的活性恢复和冲洗频率, 综合填料表面杂质的脱落和出水水质情况, 确定反冲洗强度为5.2 L·(m2·s)-1, 从图 5可看出随着反冲洗时间的增长, 填料活性恢复所用时间也在不断增加, 这说明反冲洗过程中, 水中的余氯以及水流对填料的冲刷会使得填料表面的微生物活性下降, 所以反冲洗时间越长, 填料反硝化活性恢复所用时间也越长.另一方面, 反冲洗时间与冲洗频率呈反比趋势, 这说明反冲洗时间越长对DN池的冲洗也越彻底.综合两者变化趋势, 确定DN池适宜的反冲洗时间为7 min.
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图 5 不同反冲洗条件与填料活性恢复所用时间变化关系 Fig. 5 Relation between different backwashing conditions and recovery time of filler activity |
如图 6所示, 反冲洗过程中强劲的水流冲击会影响填料的生物活性, 且由于实验条件所限, 反冲洗用水为自来水带有少量余氯, 所以在反冲洗结束后的短时间内, 包埋填料TN去除率下降较为明显.在7 min冲洗时间条件下, 冲洗结束后运行70 min左右, 出水TN即可小于5 mg·L-1, 此时认为填料完成活性恢复, 这明显优于一般生物滤池120 min左右的冲洗后活性恢复时间[24], 表明反冲洗过程并未造成填料上细菌的流失, 包埋填料对微生物有良好的保护作用, 可抵抗一定强度的水流冲击.
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图 6 反硝化填料反冲洗后运行时间与活性恢复时间 Fig. 6 Relation between run time and activity recovery time of denitrifying filler |
D2阶段DN池稳定运行的进水量为7.2 m3·d-1, HRT为30 min, DN池成功启动后稳定运行1 a, 自然水温变化范围为14~28℃.从图 7可以看出, 随冬季温度降低, DN池进水TN浓度有升高趋势, 出水TN出现小幅波动, 但仍保持在5 mg·L-1以下, 这表明DN池在中试规模条件下稳定运行, 出水TN可稳定在5 mg·L-1以下, 同时随温度的四季变化以及进水TN的波动, DN池出水较稳定, 处理效果明显优于生物滤池工艺[25], 经过一年连续运行, 填料在结构上也表现出良好的完整性.
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图 7 DN池稳定运行TN去除效果与温度变化关系 Fig. 7 Relation between TN removal effect and temperature change in stable operation of DN pool |
高通量测序可有效反映DN池运行前后包埋填料上微生物的种群变化, 表 2为样本α多样性统计, 其中Y1为DN池运行前的填料样本, ZYK-1为稳定运行1 a后的样本, 表中Coverage指数为样本文库覆盖率, 其数值越高, 则样本中序列被测出的概率越高, ACE指数指示菌群丰富度, 数值越大则丰富度越高, Shannon和Simpson指数表示菌群多样性, Shannon指数值越大表明群落多样性越高, Simpson指数值越大表明群落多样性越低.
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表 2 包埋填料微生物多样性统计 Table 2 Microbial diversity statistics of embedded fillers |
从表 2可看出, DN池运行前后对比, 包埋填料上的ACE和Shannon指数都有明显增大, 这说明填料上微生物的菌群丰度和多样性有了明显提高, 表明广谱性反硝化菌有效地保留了以目标细菌为核心的菌群结构, 为填料适应水质条件复杂的市政污水提供了菌群基础, 也说明填料可成为良好的微生物生长载体.
2.7 微生物群落结构分析包埋填料上微生物菌群多样性变化表明DN池运行前后填料上菌群结构发生了变化, 反硝化细菌种类繁多, 已被报道的多达50多个属, 130多个种[26], 图 8为包埋填料上微生物主要菌属分布(仅列出1%以上), 可明显看出Y1中两种反硝化菌属Thauera(44.32%)和Paracoccus(31.36%)为主要优势菌属, 这从微生物层面解释了DN池快速启动的原因.经市政污水运行后填料上反硝化功能菌属多样性有所提高, 数量上明显增加的Pseudomonas(15.26%)和Comamonas (2.58%)均为污水处理中常见的反硝化菌属, 而Thauera(31.27%)和Paracoccus(19.9%)仍保持明显菌群优势, 这保证了包埋反硝化填料良好的脱氮性能.经市政污水运行后的填料上逐步形成了广谱性的反硝化脱氮菌群, 这使包埋填料具备了抵抗温度、水质条件变化的能力, 保证了DN池长期运行的出水TN稳定在5mg·L-1以下.
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图 8 反硝化填料运行前后微生物群落结构对比(属层面) Fig. 8 Contrast in microbial community structure before and after denitrification filler operation (generic level) |
反硝化过程分为两部分, 由亚硝酸盐转化为氧化氮的过程是反硝化有别于其他硝酸盐代谢的标志性反应, 亚硝酸盐还原酶(nir)是此反应重要的催化酶, 同时nir基因也是反硝化功能基因中研究最多的基因[27, 28], 其分为两种类型, 一种为可溶性含铜酶, 由nirK基因编码, 另一种为细胞色素还原酶, 由nirS编码.其中nirS为反硝化细菌检测的一个重要靶基因.
从表 3可看出, 反硝化功能基因nirS拷贝数由5.04×108 copies·g-1增长到1.33×109copies·g-1, 这表明DN池运行过程中, 由反硝化功能基因编码的细菌总量得到了提升, 这说明反硝化功能菌属可在填料上生长繁殖, 从而保证了填料高效的脱氮效率.
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表 3 反硝化功能基因定量分析 Table 3 Quantitative analysis of functional denitrification gene nirS |
3 结论
(1) 包埋反硝化填料能快速适应污水厂二级出水水质, 可有效抵抗市政污水水质条件及四季温度的变化, 使出水TN稳定在5 mg·L-1以下.
(2) 包埋反硝化填料对二级出水中COD的利用率最高可达到67.5%, 从而有效降低了外加碳源的投加量, 降低了出水COD的浓度.
(3) 高通量测序分析表明, 填料经稳定运行, 核心功能菌多样性得到了提高, 形成了广谱性的反硝化脱氮菌群.
(4) qPCR检测分析显示, 运行后反硝化功能基因拷贝数有了明显增加, 这表明具有反硝化功能的菌属数量有所增加, 证明填料可以成为良好的微生物生长繁殖载体.
[1] | Yang C, Zhang W, Liu R H, et al. Phylogenetic diversity and metabolic potential of activated sludge microbial communities in full-scale wastewater treatment plants[J]. Environmental Science & Technology, 2011, 45(17): 7408-7415. |
[2] | Acero J L, Benitez F J, Leal A I, et al. Membrane filtration technologies applied to municipal secondary effluents for potential reuse[J]. Journal of Hazardous Materials, 2010, 177(1-3): 390-398. DOI:10.1016/j.jhazmat.2009.12.045 |
[3] |
潘碌亭, 谢欣珏, 王九成, 等. 脱氮除磷生物滤池填料制备及其对农村生活污水的处理效果[J]. 农业工程学报, 2017, 33(9): 230-236. Pan L T, Xie X J, Wang J C, et al. Preparation of denitrification and dephosphorization biological fillers and its effect on treatment of rural domestic sewage[J]. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering, 2017, 33(9): 230-236. |
[4] |
孙迎雪, 胡银翠, 孙云祥, 等. 反硝化生物滤池深度脱氮机理[J]. 环境工程学报, 2012, 6(6): 1857-1862. Sun Y X, Hu Y C, Sun Y X, et al. Denitrification biological filter as tertiary treatment for nitrogen removal[J]. Techniques and Equipment for Environmental Pollution Control, 2012, 6(6): 1857-1862. |
[5] |
李鑫玮, 阜崴, 魏威, 等. 反硝化滤池深度脱氮效能分析及工程应用[J]. 中国给水排水, 2016, 32(21): 132-136. Li X W, Fu W, Wei W, et al. Efficiency analysis and engineering application for advanced nitrogen removal in denitrification biofilter[J]. China Water & Wastewater, 2016, 32(21): 132-136. |
[6] | Pujol R, Hamon M, Kandel X, et al. Biofilters:flexible, reliable biological reactors[J]. Water Science & Technology, 1994, 29(10-11): 33-38. |
[7] | Cox H H, Moerman R E, Van Baalen S, et al. Performance of a styrene-degrading biofilter containing the yeast Exophiala jeanselmei[J]. Biotechnology and Bioengineering, 1997, 53(3): 259-266. DOI:10.1002/(SICI)1097-0290(19970205)53:33.0.CO;2-H |
[8] |
张勇, 王淑莹, 赵伟华, 等. 中试规模AAO-曝气生物滤池双污泥系统的启动运行[J]. 化工学报, 2015, 66(10): 4228-4235. Zhang Y, Wang S Y, Zhao W H, et al. Start-up of pilot-scale AAO-BAF two-sludge system[J]. CIESC Journal, 2015, 66(10): 4228-4235. |
[9] |
江肖良, 李孟, 张少辉, 等. 4种不同工况生物滤池净化效能与微生物特性分析[J]. 环境科学, 2018, 39(12): 5503-5513. Jiang X L, Li M, Zhang S H, et al. Purification efficiency and microbial characteristics of four biofilters operated under different conditions[J]. Environmental Science, 2018, 39(12): 5503-5513. |
[10] | 徐建斌.一体化生物滤池处理城市污水试验研究[D].重庆: 重庆大学, 2005. |
[11] | Cui B, Liu X H, Yang Q, et al. Achieving partial denitrification through control of biofilm structure during biofilm growth in denitrifying biofilter[J]. Bioresource Technology, 2017, 238: 223-231. DOI:10.1016/j.biortech.2017.04.034 |
[12] | Kent T D, Fitzpatrick C S B, Williams S C. Testing of biological aerated filter (BAF) media[J]. Water Science and Technology, 1996, 34(3-4): 363-370. DOI:10.2166/wst.1996.0452 |
[13] |
欧阳丽华, 周伟丽, 张振家, 等. 包埋固定化微生物的硫自养反硝化实验研究[J]. 环境科学, 2011, 32(6): 1644-1652. Ouyang L H, Zhou W L, Zhang Z J, et al. Study on sulfur-based autotrophic denitrification by immobilized pellets[J]. Environmental Science, 2011, 32(6): 1644-1652. |
[14] |
王里奥, 崔志强, 钱宗琴, 等. 微生物固定化的发展及在废水处理中的应用[J]. 重庆大学学报, 2004, 27(3): 125-129. Wang L A, Cui Z Q, Qian Z Q, et al. Advances in immobilized microorganism and its applications of wastewater treatment[J]. Journal of Chongqing University, 2004, 27(3): 125-129. |
[15] |
许晓毅, 尤晓露, 吕晨培, 等. 包埋固定化活性污泥脱氮特性与微生物群落分析[J]. 环境科学, 2017, 38(5): 2052-2058. Xu X Y, You X L, Lü C P, et al. Nitrogen removal performance and microbial community analysis of activated sludge immobilization[J]. Environmental Science, 2017, 38(5): 2052-2058. |
[16] | Chen K C, Wu J Y, Huang C C, et al. Decolorization of azo dye using PVA-immobilized microorganisms[J]. Journal of Biotechnology, 2003, 101(3): 241-252. DOI:10.1016/S0168-1656(02)00362-0 |
[17] |
王静萱, 李军, 张振家, 等. 固定化包埋颗粒对二级出水深度脱氮特性研究[J]. 环境科学学报, 2013, 33(2): 389-394. Wang J X, Li J, Zhang Z J, et al. Nitrogen removal of the secondary effluent by embedded immobilized bacteria in moving-bed[J]. Acta Scientiae Circumstantiae, 2013, 33(2): 389-394. |
[18] | Rezaee A, Godini H, Bakhtou H. Microbial cellulose as support material for the immobilization of denitrifying bacteria[J]. Environmental Engineering and Management Journal, 2008, 7(5): 589-594. DOI:10.30638/eemj.2008.082 |
[19] | Wang P, Yuan Y Z, Li Q, et al. Isolation and immobilization of new aerobic denitrifying bacteria[J]. International Biodeterioration & Biodegradation, 2013, 76: 12-17. |
[20] | 杨宏, 姚仁达, 尚海源, 等.一种基于网状载体的反硝化细菌固定化直筒状生物活性填料制备及应用[P].中国专利: CN 103951050A, 2014-04-04. |
[21] |
孟婷, 杨宏. 高效反硝化细菌的快速培养及群落结构多样性分析[J]. 环境科学, 2017, 38(9): 3816-3822. Meng T, Yang H. Rapid culture, microbial community structure, and diversity of high-efficiency denitrifying bacteria[J]. Environmental Science, 2017, 38(9): 3816-3822. |
[22] | 国家环境保护总局. 水和废水监测分析方法[M]. (第四版). 北京: 中国环境科学出版社, 2002. |
[23] | 孙颖.曝气生物滤池处理二级出水的试验研究[D].天津: 天津大学, 2008. |
[24] |
李雨霏, 韩洪军, 胡宏博, 等. 前置反硝化生物滤池菌群功能恢复研究[J]. 安全与环境学报, 2011, 11(3): 32-35. Li Y F, Han H J, Hu H B, et al. On the functional recovery of microbial community in pre-denitrification aerated filter[J]. Journal of Safety and Environment, 2011, 11(3): 32-35. DOI:10.3969/j.issn.1009-6094.2011.03.008 |
[25] | Chen S D, Chen C Y, Wang Y F. Treating high-strength nitrate wastewater by three biological processes[J]. Water Science and Technology, 1999, 39(10-11): 311-314. DOI:10.2166/wst.1999.0672 |
[26] |
肖晶晶, 郭萍, 霍炜洁, 等. 反硝化微生物在污水脱氮中的研究及应用进展[J]. 环境科学与技术, 2009, 32(12): 97-102. Xiao J J, Gou P, Huo W J, et al. Application of denitrifying microbes to wastewater denitrification[J]. Environmental Science & Technology, 2009, 32(12): 97-102. DOI:10.3969/j.issn.1003-6504.2009.12.022 |
[27] | Braker G, Zhou J Z, Wu L Y, et al. Nitrite reductase genes (nirK and nirS) as functional markers to investigate diversity of denitrifying bacteria in Pacific Northwest marine sediment communities[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2000, 66(5): 2096-2104. DOI:10.1128/AEM.66.5.2096-2104.2000 |
[28] |
张旭志, 杨倩倩, 赵俊, 等. 反硝化功能基因nirS和nirK及其检测技术研究进展[J]. 微生物学杂志, 2018, 38(4): 84-91. Zhang X Z, Yang Q Q, Zhao J, et al. Advances in denitrification functional gene nirS and nirK and their detection technology[J]. Journal of Microbiology, 2018, 38(4): 84-91. DOI:10.3969/j.issn.1005-7021.2018.04.012 |