2. 中国科学院大学, 北京 100049
2. University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China
多环芳烃(polycyclic aromatic hydrocarbons,PAHs)和砷(As)是环境中普遍存在的有毒污染物,具有高毒性、致癌、致畸作用,并且两者共存会改变生物的基因表达并加大致癌风险[1, 2]. PAHs和As在人类工业活动过程中会释放到环境并在土壤中累积形成复合污染. Elgh-Dalgren等[3]对木材加工厂调查发现,土壤中PAHs和As含量分别高达46 mg·kg-1和105 mg·kg-1.朱岗辉等[4]对我国南部典型工业场地调查发现,PAHs与As复合污染较普遍,其中,采煤厂主要存在As和PAHs污染,超标率分别为87.5%和75.0%. Sun等[5]研究证实,蜈蚣草是治理As和PAHs复合污染的优选植物,它不仅对As有较好的富集能力,同时对PAHs具有较强的累积作用,地上部累积可超过1 000 μg·kg-1.
13 C-核磁共振(13 C-NMR)波谱能在不改变植物原样结构的基础上对其有机质的碳结构骨架进行定性和定量分析. Ahmad等[6]应用13 C-NMR技术研究表明,土壤有机物的碳基团能显著影响其对有机污染物的吸附作用,芳香碳是影响土壤有机物对非离子型杀虫剂吸附作用的关键因素. 13 C-NMR具有可以直接测量碳骨架、化学位移范围宽、信息量大等优点,近年来开始应用于有机质结构对污染物吸附影响的研究[7, 8].
离体鲜根吸收污染物实验可用来研究植物根系对污染物的吸收特征与机制. Cheng等[9]利用两种红树属植物离体鲜根研究了根木质化/木栓化对红树林吸收和耐受铅(Pb)的影响,结果表明根部木质化/木栓化可以有效限制植物根系对Pb的吸收和积累. Su等[10]开展水稻离体鲜根对有机污染物的吸收机制研究发现,水稻根系对极性有机污染物的吸收主要通过共质体途径,对类似于PHE的非极性有机污染物则通过质外体途径吸收.本研究采用蜈蚣草离体鲜根吸收As和PAHs实验,探索蜈蚣草根部吸收两种污染物的特征规律,并借用固态13 C-NMR技术检测蜈蚣草根部不同有机基团,探明不同碳基团与As和PAHs吸收的相互关系.
1 材料与方法 1.1 实验设计将采自湖南郴州市的蜈蚣草孢子均匀撒在播种盘基质中(花卉土:蛭石=1:1),洒水保持湿润,覆薄膜保湿,置于温室内培育,室内昼间温度25℃,夜间温度20℃,湿度65%.当孢子发育出数片幼叶时,分苗移栽到1/5强度的霍格兰营养液(pH=6.0)中进行培养. 5个月后,选取长势优良且基本一致的蜈蚣草,在流动的自来水下将蜈蚣草根部洗净,再用去离子水冲洗3遍.随后将洗净的鲜根剪成1~2 cm段备用,放置于湿润的纱布间防止其在称量过程中失水.
本实验共设置8组处理:空白对照(CK)、单独加砷(As)、单独加菲(PHE)、砷加菲(As+PHE)、单独加菲降解菌(产碱杆菌Alcaligenes sp.,B)、菲降解菌加砷(As+B)、菲降解菌加菲(PHE+B)、菲降解菌加砷和菲(As+PHE+B).实验中砷选取砷酸钠(Na2HAsO4·7H2O),五价砷的配置浓度为10 mg·L-1,菲的配置浓度为2 mg·L-1.称取5 g鲜根样品置于含有不同处理营养液的锥形瓶中,溶液体积为30 mL,恒温振荡24 h (37℃,150 r·min-1),每组处理设置3个重复.振荡结束后将鲜根收获,选取一部分鲜根105℃杀青30 min,65°烘干24 h,测定干重,用于总砷测定.剩余部分鲜根冷冻干燥24 h,冰浴磨碎于-80℃冷藏,用于菲含量和碳基团等测定.振荡前后培养液均留样保存,并测定其中的总As和PHE的浓度.
1.2 总砷含量的测定将烘干的鲜根样品采用HNO3-HClO4(US EPA 3050)方法消煮,定容稀释后,用原子荧光光度计(AFS-9130)测定总As含量.分析过程所用试剂均为优级纯(GR),并采用国家标准参比物质(GBW-07603)作为分析质量控制的标准[5].
1.3 菲含量的测定将溶液样品和冰浴磨碎后的鲜根样品,均用丙酮和二氯甲烷混合溶液(体积比1:1)超声萃取3次,上层萃取液旋转蒸发浓缩至约0.5 mL,转移到硅胶柱中净化,并用正己烷和二氯甲烷混合液淋洗,承接的溶液旋转蒸发至约1 mL,加入7~8 mL正己烷,继续旋转蒸发至约0.5 mL,加内标后定容至1 mL.采用GC-MS (Agilent 6890)测定PHE的含量(n=3,RSD < 10.58)[5].
1.4 13 C-NMR测定蜈蚣草根的13 C-NMR波谱用瑞士布鲁克AVANCE Ⅲ 400 MHz型固体核磁共振仪检测.采用交叉极化-边带全抑制魔角旋转技术,转子直径为4 mm,光谱频率为100.37 MHz、旋转频率为5 000 Hz,接触时间为3 ms、循环延迟时间为1 s,采样次数为6 000次.谱图的化学位移用外标甘氨酸的羰基碳(176.03 ppm)校正.
1.5 数据与图谱处理数据采用SPSS 21.0(SPSS Inc, Chicago)软件进行方差分析与显著性分析,均值差的显著水平为0.05;并用Origin 8.6软件绘制图表;蜈蚣草鲜根样品的13 C核磁共振波谱图采用Peakfit 4.0分峰软件进行分峰解叠.
2 结果与分析 2.1 蜈蚣草离体鲜根中砷的含量在无蒸腾作用条件下,蜈蚣草离体鲜根对砷表现出较强的吸收和累积作用(见表 1).在添加砷的处理条件下,添加的菲和菲降解菌促进蜈蚣草离体鲜根吸收砷,不同处理中砷含量由大到小顺序为: As+PHE+B>As+PHE>As+B>As,其中,As+PHE+B处理中的砷含量比单独砷处理提高了10%.在不添加砷的处理组中蜈蚣草离体鲜根和培养液中均检出砷,这可能是由于前期育苗土壤和培养基药品中砷带入引起的.
![]() |
表 1 蜈蚣草离体鲜根对砷的富集情况1) Table 1 Arsenate accumulation in the excised roots of P. vitatta L. |
2.2 蜈蚣草离体鲜根对菲的吸收
蜈蚣草离体鲜根对菲具有一定的耐受性,并且能够吸收和累积一定含量的菲(见表 2).添加砷和菲降解菌,有助于促进蜈蚣草离体鲜根对菲的吸收和积累,各处理间蜈蚣草离体鲜根中菲含量为As+PHE+B>As+PHE>PHE+B>PHE,但前3处理之间并无显著性差异,不过均显著高于单独菲处理.与不添加砷相比,添加砷后蜈蚣草离体鲜根中的菲含量显著升高,菲含量是不添加砷的1.15~1.53倍.在不含砷的条件下,添加菲降解菌能够显著促进蜈蚣草离体鲜根对菲的吸收;而当培养液中加砷后,菲降解菌对蜈蚣草离体鲜根吸收菲的促进作用不显著.蜈蚣草根中累积菲的量非常低,为47.5×10-3~78.7×10-3 μg,占菲总去除量的0.1%左右,表明蜈蚣草吸收作用对于菲的去除贡献率很小,可能是挥发、光解及菲降解菌的降解作用对培养液中菲的去除起主要作用.
![]() |
表 2 蜈蚣草离体鲜根对菲的吸收和累积情况1) Table 2 Phenanthrene uptake and accumulation in the excised roots of P. vitatta L. |
2.3 蜈蚣草鲜根的固态13 C核磁共振波谱分析
根据已有研究对13 C-NMR波谱中有机物主要碳基团化学位移的分析[11~13],有机物的碳化学位移主要分为4部分:烷基碳区(0~50 ppm)、烷氧基碳区(50~110 ppm)、芳香碳区(110~160 ppm)和羰基碳区(160~220 ppm). 13 C-NMR波谱中具体功能区峰位碳基团的化学位移情况如表 3所示[14~17].
![]() |
表 3 13 C-NMR图谱中主要功能区峰位C基团归属 Table 3 Carbon groups distribution in solid-state 13 C-NMR spectra |
蜈蚣草离体鲜根样品的13 C-NMR波谱如图 1所示,8组不同处理的离体鲜根样品13 C-NMR波谱基本一致,主要吸收峰位于50~110 ppm的烷氧基碳区中的72 ppm和105 ppm处.通过定性分析可知,在烷基碳区,主要为与芳环相连的甲基碳(21 ppm)和无定形(CH2)n长链碳(30 ppm)[14, 18~20];在烷氧基碳区,主要为碳水化合物中C2至C6结构的吸收峰(63~64、71~74、82~89 ppm)和多糖中双氧烷基碳(乙缩醛)的吸收(105 ppm)[21~25],其中63~65 ppm和71~75 ppm分别为碳水化合物中的伯醇和仲醇基碳的吸收峰[26, 27],且主要来源于纤维素类物质的碳水化合物[28];芳香碳区中,115 ppm和130 ppm的峰主要是被羧基或羧甲基取代的芳香碳以及与O、N等取代基间位的连H芳香碳的吸收峰[14, 26],而145 ppm为酚基碳的吸收峰.羰基碳区的峰信号只在173 ppm处出现,其他区域均没有峰信号出现,表明其中无醛、酮、醌类化合物的羰基碳,主要为羧酸、酯和酰胺类的羰基羧基碳[26, 27, 29].
![]() |
图 1 不同处理鲜根的13 C-NMR图谱 Fig. 1 Solid-state 13 C-NMR spectra of the excised roots |
由表 4可知,蜈蚣草离体鲜根样品中的有机质以烷氧基碳比例最高(65.51%~70.58%),其次为芳香碳(13.36%~18.41%)和烷基碳(10.21%~12.65%),羧基碳的比例最低(3.41%~5.78%).与空白对照相比,添加As、PHE后,蜈蚣草鲜根样品中的烷基碳和烷氧碳比例降低,芳香碳和羧基碳则分别增加了29.4%~37.8%和48.1%~69.5%.在实验处理组中,菲处理后的蜈蚣草离体鲜根烷基碳和芳香碳比例最高,而羧基碳比例最低;As+PHE处理后的蜈蚣草离体鲜根中烷氧基碳比例最高,其烷基碳比例则最低;对于羧基碳而言,比例最高的是As+PHE+B处理组.在培养液中添加菲降解菌能够提高蜈蚣草离体鲜根中羧基碳比例,但会降低鲜根中有机质的芳香性和疏水性.
![]() |
表 4 鲜根样品中不同类型C的分布1)/% Table 4 Carbon groups distribution in the excised roots of P. vitatta L./% |
3 讨论 3.1 蜈蚣草根部对砷与菲的吸收特征
蜈蚣草离体根能有效吸收环境中的砷和菲,在砷、菲和菲降解菌存在条件下,蜈蚣草离体根对砷、菲的吸收效果明显增强(图 2):加菲处理后根部砷富集能力提升,砷富集系数为不加菲处理的一倍以上;加砷处理后,蜈蚣草离体鲜根中菲含量升高,其富集系数分别是不加砷处理的1.26倍和1.58倍;菲降解菌的添加对砷吸收略有促进作用,但可使菲的富集有较大幅度提升.推测导致这种积极作用的可能原因主要是污染物胁迫下蜈蚣草根系分泌物组分和含量的改变促进了根部对砷和菲的吸收.如多环芳烃胁迫会改变植物根系分泌的可溶性有机碳、草酸和多糖等组分和含量[30, 31],蜈蚣草在砷胁迫下会产生大量的可溶性有机碳(如植酸和草酸等有机酸)根系分泌物[32],分泌的有机酸是能够促进植物对砷的吸收.另外可能原因是微生物作用下改变了植物根对污染物的根表吸附,Gao等[33]研究发现过类似现象,添加PAHs降解菌可以促进水稻根对菲和芘的根表吸附. Sun等[5]研究发现砷共存会影响蜈蚣草根对菲的吸收机制并推断砷可能改变了蜈蚣草根的细胞通透性或根构型,从而影响了蜈蚣草根对菲的根表吸附.
![]() |
不同字母表示各处理间的显著性差异,P < 0.05 图 2 不同处理条件下蜈蚣草离体鲜根的富集系数 Fig. 2 BCF of arsenate and phenanthrene in the excised roots of P. vitatta L. |
采用固态13 C-NMR技术对蜈蚣草离体鲜根中的主要碳基团进行研究发现,离体鲜根样品的碳基团主要以烷氧基碳为主,且主要来源于碳水化合物(如纤维素和多糖等).通过定性和定量分析表明,砷和菲的添加会影响蜈蚣草离体鲜根的碳结构.添加砷和菲后,蜈蚣草离体鲜根样品的羧基碳比例增加,且羧基碳的比例随着蜈蚣草体内砷、菲含量的增加而升高.根据13 C-NMR波谱特征以及碳化学位移归属可知,蜈蚣草离体鲜根样品中的羧基碳主要来自羧酸、酯和酰胺类物质.植物根部对有机污染物吸收方式可分主动吸收和被动吸收,非离子型的有机污染物主要是通过被动扩散的形式进入植物根系,这个过程也可简单看成是有机污染物在根部有机组分和环境介质之间的平衡分配过程. Gao等[34]研究了12种植物吸收积累PAHs的能力,发现根系富集系数与植物的脂肪含量呈显著正相关,高脂肪含量的植物根系对PAHs的富集、积累能力较强. Zhang等[35]研究发现,小球藻对菲的吸附容量均与极性官能团呈负相关关系,与烷基碳和聚亚甲基碳、芳香碳呈正相关关系,聚亚甲基碳、脂肪结构以及芳香结构对菲的吸附可同时起作用.
脂族碳与芳香碳的比值主要用以反映植物根中有机质分子结构的复杂程度,该比值越高表明蜈蚣草离体鲜根中芳香核结构越少,缩合程度越低,分子结构也越简单.添加砷和菲等外源物质后,蜈蚣草离体鲜根中有机质的芳香碳比例随着砷和菲含量的升高而增加,表明在砷、菲污染胁迫下,蜈蚣草离体鲜根为应对污染胁迫形成了分子结构更为稳定和复杂的芳香类有机质,从而提高离体鲜根的抗性和适应性.
4 结论蜈蚣草离体鲜根对砷和菲均表现出较强的吸收作用,砷的添加能促进蜈蚣草离体鲜根对菲的吸收,同样,菲也能提高砷的富集能力.菲降解菌的添加能够显著促进蜈蚣草离体鲜根对菲的吸收和富集作用,但对砷的吸收影响不大.采用固态13 C-NMR技术研究发现,蜈蚣草离体鲜根中以烷氧碳为主,羧基碳比例最低,且主要来源于羧酸、酯和酰胺类物质.砷、菲和菲降解菌的添加会增加蜈蚣草离体鲜根中羧基碳的比例,提高芳香性和疏水性.
[1] | Maier A, Schumann B L, Chang X Q, et al. Arsenic co-exposure potentiates benzo[a]pyrene genotoxicit[J]. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesi, 2002, 517(1-2) : 101–111. DOI: 10.1016/S1383-5718(02)00057-8 |
[2] | Li Q, Lauer F T, Liu K J, et al. Low-dose synergistic immunosuppression of T-dependent antibody responses by polycyclic aromatic hydrocarbons and arsenic in C57BL/6J murine spleen cells[J]. Toxicology and Applied Pharmacology, 2010, 245(3) : 344–351. DOI: 10.1016/j.taap.2010.03.020 |
[3] | Elgh-Dalgren K, Arwidsson Z, Camdzija A, et al. Laboratory and pilot scale soil washing of PAH and arsenic from a wood preservation site: changes in concentration and toxicity[J]. Journal of Hazardous Materials, 2009, 172(2-3) : 1033–1040. DOI: 10.1016/j.jhazmat.2009.07.092 |
[4] | 朱岗辉, 孙璐, 廖晓勇, 等. 郴州工业场地重金属和PAHs复合污染特征及风险评价[J]. 地理研究, 2012, 31(5) : 831–839. Zhu G H, Sun L, Liao X Y, et al. Combined pollution of heavy metals and PAHs and its risk assessment in industrial sites of Chenzhou city[J]. Geographical Research, 2012, 31(5) : 831–839. |
[5] | Sun L, Yan X L, Liao X Y, et al. Interactions of arsenic and phenanthrene on their uptake and antioxidative response in Pteris vittata L[J]. Environmental Pollution, 2011, 159(12) : 3398–3405. DOI: 10.1016/j.envpol.2011.08.045 |
[6] | Ahmad R, Kookana R S, Alston A M, et al. The nature of soil organic matter affects sorption of pesticides. 1. Relationships with carbon chemistry as determined by 13 C CPMAS NMR spectroscopy[J]. Environmental Science & Technology, 2001, 35(5) : 878–884. |
[7] | Wang K J, Xing B S. Chemical extractions affect the structure and phenanthrene sorption of soil humin[J]. Environmental Science & Technology, 2005, 39(21) : 8333–8340. |
[8] | Dutta A, Mandal A, Manna S, et al. Effect of organic carbon chemistry on sorption of atrazine and metsulfuron-methyl as determined by 13 C-NMR and IR spectroscopy[J]. Environmental Monitoring and Assessment, 2015, 187(10) : 620. DOI: 10.1007/s10661-015-4837-3 |
[9] | Cheng H, Wang Y S, Liu Y, et al. Pb uptake and tolerance in the two selected mangroves with different root lignification and suberization[J]. Ecotoxicology, 2015, 24(7-8) : 1650–1658. DOI: 10.1007/s10646-015-1473-1 |
[10] | Su Y H, Zhu Y G. Transport mechanisms for the uptake of organic compounds by rice (Oryza sativa) roots[J]. Environmental Pollution, 2007, 148(1) : 94–100. DOI: 10.1016/j.envpol.2006.11.004 |
[11] | Mao J D, Hu W G, Schmidt-Rohr K, et al. Quantitative characterization of humic substances by solid-state carbon-13 nuclear magnetic resonance[J]. Soil Science Society of America Journal, 2000, 64(3) : 873–884. DOI: 10.2136/sssaj2000.643873x |
[12] | Carvalho A M, Bustamante M M C, Alcantara F A, et al. Characterization by solid-state CPMAS 13 C NMR spectroscopy of decomposing plant residues in conventional and no-tillage systems in Central Brazil[J]. Soil and Tillage Research, 2009, 102(1) : 144–150. DOI: 10.1016/j.still.2008.08.006 |
[13] | Singh N, Berns A E, Hennecke D, et al. Effect of soil organic matter chemistry on sorption of trinitrotoluene and 2, 4-dinitrotoluene[J]. Journal of Hazardous Materials, 2010, 173(1-3) : 343–348. DOI: 10.1016/j.jhazmat.2009.08.090 |
[14] | 李丽, 冉勇, 盛国英, 等. 泥炭土连续碱抽提腐殖酸的分子结构特征[J]. 分析化学, 2002, 30(11) : 1303–1307. Li L, Ran Y, Sheng G Y, et al. Molecular structure characterization of humic acids progressively extracted from a peat soil[J]. Chinese Journal of Analytical Chemistry, 2002, 30(11) : 1303–1307. |
[15] | Solomon D, Lehmann J, Kinyangi J, et al. Long-term impacts of anthropogenic perturbations on dynamics and speciation of organic carbon in tropical forest and subtropical grassland ecosystems[J]. Global Change Biology, 2007, 13(2) : 511–530. DOI: 10.1111/gcb.2007.13.issue-2 |
[16] | 毛霞丽, 陆扣萍, 孙涛, 等. 长期施肥下浙江稻田不同颗粒组分有机碳的稳定特征[J]. 环境科学, 2015, 36(5) : 1827–1835. Mao X L, Lu K P, Sun T, et al. Effect of long-term fertilizer application on the stability of organic carbon in particle size fractions of a paddy soil in Zhejiang Province, China[J]. Environmental Science, 2015, 36(5) : 1827–1835. |
[17] | Cassigneul A, Alletto L, Benoit P, et al. Nature and decomposition degree of cover crops influence pesticide sorption: quantification and modelling[J]. Chemosphere, 2015, 119 : 1007–1014. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2014.08.082 |
[18] | Schnitzer M, Kodama H, Ripmeester J A. Determination of the aromaticity of humic substances by X-ray diffraction analysis[J]. Soil Science Society of America Journal, 1991, 55(3) : 745–750. DOI: 10.2136/sssaj1991.03615995005500030018x |
[19] | Réveillé V, Mansuy L, Jardé É, et al. Characterisation of sewage sludge-derived organic matter: lipids and humic acids[J]. Organic Geochemistry, 2003, 34(4) : 615–627. DOI: 10.1016/S0146-6380(02)00216-4 |
[20] | Pereira M A, Pires O C, Mota M, et al. Anaerobic biodegradation of oleic and palmitic acids: evidence of mass transfer limitations caused by long chain fatty acid accumulation onto the anaerobic sludge[J]. Biotechnology and Bioengineering, 2005, 92(1) : 15–23. DOI: 10.1002/(ISSN)1097-0290 |
[21] | 窦森, 华士英. 用13 C-核磁共振方法研究有机肥料对胡敏酸结构特征的影响[J]. 吉林农业大学学报, 1999, 21(4) : 43–46. Dou S, Hua S Y. Effect of organic manure application on humic acid characteristics of soil by 13 C-NMR spectroscopy[J]. Journal of Jilin Agricultural University, 1999, 21(4) : 43–46. |
[22] | Mao J D, Xing B, Schmidt-Rohr K. New structural information on a humic acid from two-dimensional 1H-13 C correlation solid-state nuclear magnetic resonance[J]. Environmental Science & Technology, 2001, 35(10) : 1928–1934. |
[23] | Kögel-Knabner I. The macromolecular organic composition of plant and microbial residues as inputs to soil organic matter[J]. Soil Biology and Biochemistry, 2002, 34(2) : 139–162. DOI: 10.1016/S0038-0717(01)00158-4 |
[24] | Mathers N J, Xu Z H. Solid-state 13 C NMR spectroscopy: characterization of soil organic matter under two contrasting residue management regimes in a 2-year-old pine plantation of subtropical Australia[J]. Geoderma, 2003, 114(1-2) : 19–31. DOI: 10.1016/S0016-7061(02)00339-7 |
[25] | Chen C R, Xu Z H, Mathers N J. Soil carbon pools in adjacent natural and plantation forests of subtropical Australia[J]. Soil Science Society of America Journal, 2004, 68(1) : 282–291. DOI: 10.2136/sssaj2004.2820 |
[26] | Dou S, Zhang J J, Li K. Effect of organic matter applications on 13 C-NMR spectra of humic acids of soil[J]. European Journal of Soil Science, 2008, 59(3) : 532–539. DOI: 10.1111/j.1365-2389.2007.01012.x |
[27] | Guigues S, Bravin M N, Garnier C, et al. Isolated cell walls exhibit cation binding properties distinct from those of plant roots[J]. Plant and Soil, 2014, 381(1-2) : 367–379. DOI: 10.1007/s11104-014-2138-1 |
[28] | Maciel G E, Kolodziejski W L, Bertran M S, et al. Carbon-13 NMR and order in cellulose[J]. Macromolecules, 1982, 15(2) : 686–687. DOI: 10.1021/ma00230a097 |
[29] | Knicker H, Almendros G, González-Vila F J, et al. 13C-and 15N-NMR spectroscopic examination of the transformation of organic nitrogen in plant biomass during thermal treatment[J]. Soil Biology and Biochemistry, 1996, 28(8) : 1053–1060. DOI: 10.1016/0038-0717(96)00078-8 |
[30] | Muratova A, Golubev S, Wittenmayer L, et al. Effect of the polycyclic aromatic hydrocarbon phenanthrene on root exudation of Sorghum bicolor (L.) Moench[J]. Environmental and Experimental Botany, 2009, 66(3) : 514–521. DOI: 10.1016/j.envexpbot.2009.03.001 |
[31] | 杨艳, 凌婉婷, 高彦征, 等. 几种多环芳烃的植物吸收作用及其对根系分泌物的影响[J]. 环境科学学报, 2010, 30(3) : 593–599. Yang Y, Ling W T, Gao Y Z, et al. Plant uptake of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) and their impacts on root exudates[J]. Acta Scientiae Circumstantiae, 2010, 30(3) : 593–599. |
[32] | Tu S X, Ma L N, Luongo T. Root exudates and arsenic accumulation in arsenic hyperaccumulating Pteris vittata and non-hyperaccumulating Nephrolepis exaltata[J]. Plant and Soil, 2004, 258(1) : 9–19. DOI: 10.1023/B:PLSO.0000016499.95722.16 |
[33] | Gao Y Z, Cheng Z X, Ling W T, et al. Arbuscular mycorrhizal fungal hyphae contribute to the uptake of polycyclic aromatic hydrocarbons by plant roots[J]. Bioresource Technology, 2010, 101(18) : 6895–6901. DOI: 10.1016/j.biortech.2010.03.122 |
[34] | Gao Y Z, Zhu L Z. Plant uptake, accumulation and translocation of phenanthrene and pyrene in soils[J]. Chemosphere, 2004, 55(9) : 1169–1178. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2004.01.037 |
[35] | Zhang D N, Ran C Y, Yang Y, et al. Biosorption of phenanthrene by pure algae and field-collected planktons and their fractions[J]. Chemosphere, 2013, 93(1) : 61–68. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2013.04.068 |