环境科学  2019, Vol. 40 Issue (5): 2349-2356   PDF    
HN-AD菌生物强化接触氧化工艺处理猪场沼液
刘向阳1, 张千1, 吴恒1, 李宸1, 唐健泓1, 封丽2, 肖芃颖1, 赵天涛1     
1. 重庆理工大学化学化工学院, 重庆 400054;
2. 重庆市环境科学研究院, 重庆 401147
摘要: 针对养猪废水采用传统工艺经厌氧发酵处理后,形成高氨氮低碳氮比沼液,导致脱氮效果差、工艺流程复杂、启动周期较长等问题.本研究以异养硝化-好氧反硝化(HN-AD)菌为生物强化剂,以PAN活性炭纤维作为填料的生物接触氧化池(BCO)为生物膜反应器,形成生物强化BCO工艺处理猪场沼液.前期污泥驯化阶段发现,NH4+-N浓度高于500 mg·L-1时,污染物去除率明显降低,经HN-AD菌剂生物强化后,耐受NH4+-N浓度可高于600 mg·L-1且能保持污染物的高效去除.采用HN-AD生物强化的BCO工艺处理真实猪场沼液,对NH4+-N、TN和COD的平均去除率分别为86.9%、70.5%和74.4%,分别高于传统处理工艺的57.6%、50.3%和50.0%,出水浓度均低于相关污染物排放标准.采用高通量测序技术研究了功能菌富集过程中微生物群落结构的变化规律,结果表明,生物膜内属于HN-AD菌的优势菌由Alcaligenes这一种菌属增加为生物强化后的DiaphorobacterAcinetobacterThauera等多种菌属,且Acinetobacter菌属的相对丰度明显高于接种菌剂.扫描电子显微镜结果也进一步证实了生物强化的存在,紧密附着在填料上的生物膜层表面富集了以杆状和球状为主的HN-AD功能菌.
关键词: HN-AD菌剂      生物强化      生物接触氧化(BCO)工艺      猪场沼液      微生物群落结构     
Treatment of Piggery Biogas Slurry by Enhanced Biological Contact Oxidation with HN-AD Bacteria
LIU Xiang-yang1 , ZHANG Qian1 , WU Heng1 , LI Chen1 , TANG Jian-hong1 , FENG Li2 , XIAO Peng-ying1 , ZHAO Tian-tao1     
1. School of Chemical Engineering, Chongqing University of Technology, Chongqing 400054, China;
2. Chongqing Academy of Environmental Science, Chongqing 401147, China
Abstract: The conventional pretreatment process for swine wastewater is anaerobic fermentation. This process leads to the formation of high ammonia nitrogen, low carbon, and piggery biogas slurry, which usually results in poor denitrification effect, complicated process flow, and long startup period for the subsequent treatment process. In this study, a novel biological enhanced Biological Contact Oxidation (BCO) process using HN-AD bacteria as microbial inoculants, and PAN activated carbon fiber filler as biofilm carrier was proposed for the treatment of piggery biogas slurry. In the early stage of sludge acclimation, it was found that when NH4+-N concentration was higher than 500 mg·L-1, the nitrification and COD removal in BCO was severely inhibited. When the BCO was enhanced by HN-AD bacteria, however, the tolerance concentration of NH4+-N for bacteria in BCO could reach 600 mg·L-1 and the removal efficiency of NH4+-N, COD, and TN could still remain at a high level. The bio-enhanced BCO process was used to treat the piggery biogas slurry. The average removal rates of NH4+-N, TN, and COD were 86.9%, 70.5%, and 74.4%, respectively, which were higher than the 57.6%, 50.3%, and 50.0% of the traditional treatment process. The concentration of the pollutants mentioned above in the effluent was below the relevant discharge standards. The changes in the microbial community structure during the enrichment process of functional bacteria were studied by high-throughput sequencing technique. The results showed that the dominant bacteria belonging to HN-AD in the biofilm during the sludge acclimation process was Alcaligenes. After the addition of the HN-AD agent, however, the dominant bacteria were Diaphorobacter, Acinetobacter, and Thauer, and the relative abundance of Acinetobacter was much higher than that in the microbial inoculants. The results of scanning electron microscopy further confirmed the existence of bio-enhancement. The surface of the biofilm layer tightly attached to the filler was enriched with rod-like and globular HN-AD functional bacteria.
Key words: HN-AD agent      biological enhancement      biological contact oxidation (BCO)process      piggery biogas slurry      microbial community structure     

随着规模化养猪场的迅速发展, 排放量不断增加的富含有机质、N、P等营养物及致病菌等污染物的猪场沼液会带来严重的健康和环境危害[1~3].猪场沼液普遍特征为高氨氮(NH4+-N≥200 mg·L-1)、低碳氮比(C/N < 3), 其带来的两大处理技术难点为:高氨氮具有生物毒性, 抑制微生物生长; 沼液有机物浓度较低, 可生化性差, 导致C/N失调, 不能为微生物提供充足的碳源, 使得废水脱氮效果差[4, 5].为提高沼液的NH4+-N去除效率, 当前研究主要采用以下几种方式:采用氨吹脱法[6]、磷酸铵镁结晶法[7]等物化方法大幅度降低沼液中NH4+-N浓度; 添加原水或补加碳源调整碳氮比[8]; 用臭氧氧化和微电解[9, 10]等方法提高沼液可生化性能.虽然上述方法可有效降低沼液中的NH4+-N浓度, 提高其C/N及可生化性, 但以上方式存在工艺复杂且后续处理成本提高等实际问题.部分研究人员采用CANNON等新型脱氮工艺处理猪场沼液[11], 虽然该工艺在低C/N条件下可对高氨氮取得较好的去除效果, 但由于启动时间太长(210 d), 限期了其工程化应用.因此, 开发新型工艺高效处理猪场沼液势在必行.

生物接触氧化(biological contact oxidation, BCO)工艺由于对高氨氮具有一定的耐受性、抗冲击负荷能力强等特点[12], 被广泛应用于处理畜禽养殖沼液等低碳氮比有机废水[13, 14], 但受碳源不足, NH4+-N浓度高的影响, 脱氮及有机物去除效果不理想[15].鉴于此, 本研究采用课题组前期筛选的异养硝化-好氧反硝化菌(heterotrophic nitrification-aerobic denitrification, HN-AD)对BCO工艺进行生物强化, 前期研究发现, 该HN-AD菌能高效处理低碳氮比高氨氮废水.采用HN-AD菌生物强化的BCO工艺用于猪场沼液的脱氮处理, 借助BCO内载体较大的比表面积实现菌剂的固定, 并在好氧环境下, 通过运行条件优化实现系统内功能菌的富集和优势化构建, 强化氨氮和有机物的去除.前期研究表明HN-AD菌可耐高氨氮且Yang等[16]和Ren等[17]发现在低C/N条件下也能高效脱氮, 打破了人们对HN-AD菌只有在高碳氮比条件下才能获得高效脱氮的固有观念.此外, 采用生物强化的BCO工艺启动时间短、工艺流程简单(一个反应器同时实现有机物和“三氮”的同步去除), 有望成为经济、简洁、高效的新型生物脱氮工艺.

目前, 国内外HN-AD菌的工程化应用较少, 以HN-AD菌生物强化的BCO工艺进行猪场沼液处理的研究更是鲜见报道[18].本研究采用逐步增大NH4+-N负荷的策略启动BCO工艺, 稳定运行后接种HN-AD菌剂对BCO进行生物强化, 启动生物强化的BCO工艺后, 通过高通量测序技术分析生物强化前后微生物多样性的变化规律, 并结合扫描电镜(SEM)考察了填料表面生物膜的微观形态.同时考察了生物强化的BCO工艺对猪场沼液的实际脱氮效果, 以期为该技术的优化和实际应用提供理论依据.

1 材料与方法 1.1 BCO系统实验装置

BCO工艺流程图如图 1所示.系统中采用10 mm厚的长方体有机玻璃池体作为生物接触氧化池的主体, 池长500 mm, 池宽300 mm, 池高850 mm, 反应器有效容积为90 L. BCO工艺采用上流式进水、曝气、停留、出水的间歇循环运行方式.

1.调节池; 2.进水泵; 3.液体流量计; 4.进气泵; 5.气体流量计; 6.微孔曝气头; 7.组合软性填料; 8.出水口; 9.取样口; 10.出水箱 图 1 BCO工艺流程示意 Fig. 1 BCO process flow chart

1.2 实验材料

生物接触氧化池内所用载体为PAN活性炭纤维填料, 购置于南通森友炭纤维有限公司, 其主要技术参数如表 1所示[19].填料层在BCO系统中的填充高度为750 mm.

表 1 PAN活性炭纤维填料主要技术参数 Table 1 Main technical parameters of PAN activated carbon fiber packing

在启动前期向反应器中接种取自重庆巴南区某生活污水处理厂曝气池中的活性污泥, 污泥浓度为5 887 mg·L-1.

实验用水分为人工配水和猪场沼液原水.在反应器启动运行阶段的模拟废水中, COD浓度为400~2 500 mg·L-1, NH4+-N浓度为80~500 mg·L-1.其COD:TN=(5~8):1, 以无水乙酸钠为碳源, 以硫酸铵为氮源, 以磷酸氢二钾为磷源, 同时添加微量元素以保证菌液的正常生长, 其中微量元素成分为:MgSO4·7H2O 2 g·L-1、MnSO4·H2O 0.1 g·L-1、CaCl2 1.5 g·L-1、FeSO4·7H2O 0.1 g·L-1.在处理过滤后的猪场沼液阶段, 沼液中的COD、NH4+-N和TN的平均浓度分别为855.4、314.8和466.7 mg·L-1.

1.3 实验方法

初期向BCO反应器中接种15 g·L-1的活性污泥.连续闷曝2 d后, 采取间歇进水并逐渐提高进水NH4+-N浓度方式启动反应器. NH4+-N浓度梯度分别为80、100、160、300、400和500 mg·L-1, 经过90 d的活性污泥驯化培养后, 向反应器中接种课题组前期从养猪废水中分离筛选得到具有耐高NH4+-N、耐高COD、生长周期短和易于培养等性能的HN-AD菌剂, 同时添加营养物质以供菌剂生长.在经HN-AD菌生物强化的BCO系统间歇运行12 d后, 对系统及时采取排泥措施.启动过程中通过实时监测废水中有机物和含氮污染物的去除率及对填料表面的微生物进行显微镜检测.在BCO系统分别经活性污泥驯化和HN-AD菌剂生物强化前后, 选取填料上的生物膜样品提取DNA后进行多样性测序分析.同时对原始填料和HN-AD菌生物强化后BCO系统中的填料进行扫描电镜表征分析.待经HN-AD菌生物强化后的BCO系统启动成功并稳定运行后, 用该反应器序批式处理重庆市巴南区某生猪养殖场沼液, 运行参数与启动运行时保持一致.

1.4 分析方法

本实验的水质指标均采用国家规定的标准方法测定[20], DO使用HQ-30d便携式溶解氧测定仪直接检测; COD指标使用LH-16K型标准化学需氧量消解仪, 采用重铬酸钾法测定; NH4+-N采用纳氏试剂分光光度法、NO3--N采用酚二磺酸分光光度法测定; TN采用碱性过硫酸钾消解紫外分光光度法测定.

填料表面上的生物样品先采用冷冻干燥做脱水预处理[21], 然后采用TESCAN MIRA3热场发射扫描电镜观察生物膜表面微观形态结构. DNA提取和高通量测序分别选取污泥挂膜和菌剂生物强化后的生物样品, 离心弃去上清液后于-80℃保藏用于多样性测序分析.用购自天根生化科技(北京)有限公司的细菌基因组DNA提取试剂盒(TANamp Bacteria DNA Kit)提取样品的基因组DNA[22]. MiSeq平台对16S rRNA基因高变区序列进行测序, 测序区域选择V3+V4区, 测序片段为468 bp, 测序引物为338F-806R, 使用Trimmomatic、FLASH软件对MiSeq测序数据进行处理获得干净数据.在Usearch软件平台中使用uparse方法将序列按照彼此相似性为97%分归为许多小组, 一个小组为一个OTU, 从而得到OTU的代表序列.然后, 使用uchime检测PCR扩增中产生的嵌合体序列并从OTU中去除, 再用usearch_global方法将优化序列map比对回OTU代表序列, 最终得到OTU各样品序列丰度统计表[23], 相关性利用SPSS Statistics 21软件分析, 多样性数据采用i-sanger平台(http://www.i-sanger.com/)分析.

2 结果与讨论 2.1 驯化阶段BCO工艺对有机物及含氮污染物的去除效果

图 2所示, 向反应器中接种好氧污泥后, 以模拟废水通过逐渐提高NH4+-N和COD浓度驯化生物接触氧化系统.驯化过程中C/N保持为5, NH4+-N浓度从80 mg·L-1提高至500 mg·L-1.如图 2, 在提高NH4+-N浓度驯化系统过程中, 在梯度NH4+-N浓度下, 系统的去除率均呈现升高的趋势. NH4+-N浓度从80 mg·L-1升至400 mg·L-1阶段, 经过75 d的驯化之后, 72 h内NH4+-N、NO3--N、TN和COD的平均去除率分别为84.3%、30.0%、70.7%和89.6%, 但在高氨氮(>500 mg·L-1)条件下, 由于生活废水处理工艺中的活性污泥耐氨氮能力较差, 高浓度氨氮对活性污泥产生高毒性, 系统中微生物的生长受到严重抑制, 导致去除率出现下降且波动幅度较大.由此可见, 需要对生物接触氧化池进行生物强化, 使得系统中的微生物能耐受高浓度氨氮, 从而实现高效处理高氨氮猪场沼液.

图 2 BCO工艺驯化过程对NH4+-N、NO3--N、TN和COD去除率的变化情况 Fig. 2 Changes in removal rates of NH4+-N, NO3--N, TN, and COD upon adoption of the BCO process

2.2 HN-AD菌生物强化对BCO工艺处理性能的影响

为了提高生物接触氧化池系统对高浓度氨氮的处理效率, 向反应器中接种HN-AD菌, 菌剂通过在BCO填料上的负载及固定, 并在好氧环境下, 通过观察填料表面生物膜的生长变化, 及时采取排泥措施以实现污染物的高效稳定去除, 最终优化运行参数实现HN-AD菌剂在BCO反应器中的富集与优势化构建, 达到以HN-AD菌剂生物强化加强NH4+-N和COD的去除.

图 3所示, 当在第90 d高氨氮驯化后接种HN-AD菌剂, 反应器内的污染物去除率均缓慢回升, 在接种菌剂后的12 d内, 系统72 h的去除率逐渐上升, 其中NH4+-N、NO3--N、TN和COD的平均去除率分别从接种前的60.5%、30.5%、44.5%和67.3%升高至接种后的79.0%、49.9%、63.0%和73.5%.同时在接种后12 d时观察到反应器底部沉积了较多的污泥及从填料上脱落的大量生物膜, 为了抑制沉积污泥对反应器系统的影响, 对生物强化后的BCO系统及时排泥.系统排泥后, 系统NH4+-N、NO3--N、TN和COD的去除率分别上升至90.2%、43.5%、80.5%和83.2%, 污染物去除效果均较明显且能保持污染物高效稳定去除.

图 3 HN-AD菌剂生物强化对BCO工艺处理性能的影响 Fig. 3 Effect of biological enhancement of HN-AD microbial agents on the treatment performance of BCO process

2.3 HN-AD菌生物强化BCO系统处理猪场沼液效果

在经过接种污泥驯化和生物强化阶段后, 向BCO反应器系统内序批式通入重庆市巴南区某生猪养殖场沼液, 连续观察30 d, 其对NH4+-N、NO3--N、TN、COD的处理效果如图 4所示, 在HRT=24 h条件下, 沼液中NH4+-N、NO3--N、TN和COD的平均浓度可分别从314.8、143.5、466.7和855.4 mg·L-1降低至41.3、76.1、137.7和218. 4 mg·L-1.其平均去除率可分别保持稳定在86.9%、47.0%、70.5%和74.4%, 可在很大程度上实现污染物浓度的削减.出水浓度均低于《畜禽养殖业污染物排放标准》(GB 18596-2001)[24]限值(COD≤400 mg·L-1和NH4+-N≤80 mg·L-1).

图 4 BCO工艺处理猪场沼液效果 Fig. 4 BCO process treatment of pig farm biogas slurry

2.4 HN-AD菌生物强化后对BCO系统微生物群落结构的影响

对系统进行污泥驯化和HN-AD菌生物强化前后的微生物群落结构进行了多样性分析, 结果如图 5所示.在污泥驯化过程中, 通过不断提高氨氮浓度, 系统中微生物多样性发生一定的变化, 接种污泥中的HN-AD菌为Thauera 18.4%、Diaphorobacter 9.1%、Nitrosomonas 2.4%[25]Pseudomonas 1.0%[26], 在对污泥进行驯化后, 由于高氨氮的抑制作用, 系统内的主要HN-AD菌变为Diaphorobacter 2.6%、Thauera 0.7%和Acinetobacter 1.7%[17], 可见, 高浓度氨氮对活性污泥系统中的优势菌具有毒性作用, 活性污泥中属于HN-AD菌的ThaueraDiaphorobacter相对丰度急剧减少且部分硝化菌出现消亡, 同时伴随着其他新的HN-AD菌如Acinetobacter的出现, 同时结合图 2可知, 随着污泥驯化过程的继续, 系统内污染物的去除率随之得到缓慢提升, 驯化后新出现的HN-AD菌逐渐成为系统内的优势菌.

图 5 HN-AD菌剂生物强化后微生物群落结构对比 Fig. 5 Comparison of microbial community structure after bio-enhancement of HN-AD microbial agents

当驯化氨氮浓度为500 mg·L-1时, 污染物去除率出现急剧下降的趋势, 此时向反应器中接种HN-AD菌剂对BCO系统进行生物强化, 接种菌剂中的主要HN-AD菌为Alcaligenes 55.6%[27]Myroides 6.5%[28, 29]Acholeplasma 6.1%[30]Acinetobacter 1.3%[31], 经过HN-AD菌剂的生物强化后, 系统内主要的HN-AD菌分别为Diaphorobacter 10.3%、Thauera 3.6%和Acinetobacter 2.2%, 生物强化后系统优势菌由接种菌剂中的Alcaligenes变为生物强化后的DiaphorobacterThauera, 而Acinetobacter的相对丰度明显高于接种菌剂.国内外研究表明, 上述菌属均为HN-AD菌.其中Zhang等[32]发现Diaphorobacter菌属为HN-AD菌, 孙英杰等[33]和Yang等[16]也证明了Thauera菌属和Acinetobacter菌属均为HN-AD菌, 且都在系统中发挥了主要的异养硝化与好氧反硝化作用.

2.5 BCO系统生物强化后的SEM表征分析

接种HN-AD菌剂前后填料表面的SEM表征如图 6所示, 在原始填料上[图 6(a)]可明显看到整齐排列的细丝状填料, 每根填料上呈凹凸交替的沟状条纹, 此结构增大了填料表面的比表面积和吸附性能, 使大量微生物能在填料上固定生长.接种HN-AD菌剂后填料表面的微观结构如图 6(b), 在具有异养硝化-好氧反硝化功能的HN-AD菌固定在填料上后, 可在填料表面形成比表面积较大的生物膜层, 生物膜层通过局部放大后, 明显可见较多的杆状菌和球状菌在填料表面富集.结合图 5分析, 接种HN-AD菌剂生物强化后, 填料表面形成紧密相连且牢固的生物膜层, 局部放大图也进一步显示, 生物膜层中的HN-AD菌主要以杆状菌和球状菌为主.结合图 5进一步推测填料表面的杆状菌和球状菌为系统生物强化后的HN-AD优势菌, 主要为DiaphorobacterThaueraAcinetobacter, 成功实现了系统内优势菌的富集和优势化构建.

图 6 原始填料与生物强化后BCO系统中填料的SEM对比 Fig. 6 SEM comparison of the original filler and the filler in the BCO system after bio-enhancement

3 结论

(1) 投加HN-AD菌剂对BCO进行生物强化, 仅需12 d BCO系统实现稳定、高效运行.

(2) 高氨氮(>500 mg·L-1)养殖废水对BCO系统具有抑制作用. HN-AD菌生物强化可显著提高BCO系统耐高氨氮性能及脱氮效果.

(3) HN-AD菌生物强化BCO工艺对真实猪场沼液中的NH4+-N(86.9%)、TN(70.5%)和COD(74.4%)具有高效去除效果, 出水浓度均低于《畜禽养殖业污染物排放标准》限值.

(4) 高通量测序结果表明, 生物强化后实现了系统内HN-AD菌的富集且HN-AD菌优势化构建明显. SEM观察结果也进一步证实, BCO工艺生物强化后, 填料上的优势菌主要以杆状和球状的HN-AD菌为主.

参考文献
[1] Meng J, Li J L, Li J Z, et al. Nitrogen removal from low COD/TN ratio manure-free piggery wastewater within an upflow microaerobic sludge reactor[J]. Bioresource Technology, 2015, 198: 884-890. DOI:10.1016/j.biortech.2015.09.023
[2] 车建刚.臭氧/微电解耦合-生物接触氧化组合工艺处理猪场沼液的研究[D].南昌: 南昌大学, 2018.
Che J G. Study on treatment of piggery digestate wastewater with a ozone/micro-electrolysis coupled-bio-contact oxidation combined process[D]. Nanchang: Nanchang University, 2018. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10403-1018055370.htm
[3] 李文英, 彭智平, 于俊红, 等. 珠江三角洲典型集约化猪场废水污染特征及风险评价[J]. 环境科学, 2013, 34(10): 3963-3968.
Li W Y, Peng Z P, Yu J H, et al. Wastewater pollution characteristics from typical intensive pig farms in the pearl river delta and its ecological risk assessment[J]. Environmental Science, 2013, 34(10): 3963-3968.
[4] Rico C, Montes J A, Rico J L. Evaluation of different types of anaerobic seed sludge for the high rate anaerobic digestion of pig slurry in UASB reactors[J]. Bioresource Technology, 2017, 238: 147-156. DOI:10.1016/j.biortech.2017.04.014
[5] 何佳敏, 孟佳, 张永, 等. 温度降低对UMSR处理高氨氮低碳氮比养猪废水效能的影响[J]. 化工学报, 2017, 68(5): 2074-2080.
He J M, Meng J, Zhang Y, et al. Effect of lower temperature on performance of upflow microaerobic sludge reactor treating manure-free piggery wastewater with high NH4+-N and low COD/TN ratio[J]. CIESC Journal, 2017, 68(5): 2074-2080.
[6] 隋倩雯.氨吹脱与膜生物反应器组合工艺处理猪场厌氧消化液研究[D].北京: 中国农业科学院, 2014.
Sui Q W. Combined of ammonia stripping and membrane bioreactor processes for anaerobically digested swine wastewater treatment[D]. Beijing: Chinese Academy of Agricultural Sciences, 2014. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-82101-1014326346.htm
[7] 聂丽君, 李德豪, 何京东, 等. ABR-MAP-MBR组合工艺处理高浓度养殖废水研究[J]. 化工学报, 2018, 69(6): 2722-2729.
Nie L J, Li D H, He J D, et al. Treatment of high concentration piggery wastewater by ABR-MAP-MBR process[J]. CIESC Journal, 2018, 69(6): 2722-2729.
[8] 张强强.一种高含氮废水处理工程设计与运行[D].济南: 山东大学, 2017.
Zhang Q Q. Design and operation of a high nitrogen containing wastewater treatment engineering[D]. Ji'nan: Shandong University, 2017. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10422-1018008142.htm
[9] 曾鑫, 呼世斌, 屈广周, 等. 臭氧氧化处理养猪场厌氧沼液[J]. 环境工程学报, 2015, 9(7): 3332-3338.
Zeng X, Hu S B, Qu G Z, et al. Treatment of swine farm anaerobic biogas slurry by ozone oxidation[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2015, 9(7): 3332-3338.
[10] 潘碌亭, 吴锦峰, 罗华飞. 微电解-UASB-接触氧化处理羧甲基纤维素废水[J]. 化工学报, 2010, 61(5): 1275-1281.
Pan L T, Wu J F, Luo H F. Microelectrolysis-UASB-contact oxidation process for treatment of carboxymethyl cellulose production wastewater[J]. CIESC Journal, 2010, 61(5): 1275-1281.
[11] 王子凌, 信欣, 王锣, 等. CANON工艺处理猪场沼液的启动及微生物种群结构分析[J]. 环境科学学报, 2018, 38(10): 3945-3953.
Wang Z L, Xin X, Wang L, et al. Start-up and microbial communities analysis of CANON process for the treatment of anaerobic digester liquor of swine wastewater (ADLSW)[J]. Acta Scientiae Circumstantiae, 2018, 38(10): 3945-3953.
[12] 龚松. EGSB+生物接触氧化+MBR处理规模化猪场废水的试验研究[D].武汉: 武汉科技大学, 2014.
Gong S. Experimental study of EGSB+ bio-contact oxidation +MBR in swine wastewater treatment[D]. Wuhan: Wuhan University of Science and Technology, 2014. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=degree&id=Y2669453
[13] 万莉.规模化养猪场废水(沼液)BCO+SBBR好氧处理新工艺研究[D].南昌: 南昌大学, 2016.
Wan L. Study on the new technology of BCO + SBBR aerobic treatment for scaled pig farms wastewater (Biogas slurry)[D]. Nanchang: Nanchang University, 2016. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10403-1016256407.htm
[14] 赵秋菊, 马兴冠, 姜维. 生物接触氧化工艺处理奶牛养殖废水参数优化研究[J]. 水处理技术, 2015, 41(8): 115-120.
Zhao Q J, Ma X G, Jiang W. Study on parameters optimization of cows breeding wastewater by biological contact oxidation process[J]. Technology of Water Treatment, 2015, 41(8): 115-120.
[15] Zheng T L, Li P, Ma X Y, et al. Pilot-scale multi-level biological contact oxidation system on the treatment of high concentration poultry manure wastewater[J]. Process Safety and Environmental Protection, 2018, 120: 187-194. DOI:10.1016/j.psep.2018.09.013
[16] Yang L, Ren Y X, Liang X, et al. Nitrogen removal characteristics of a heterotrophic nitrifier Acinetobacter junii YB and its potential application for the treatment of high-strength nitrogenous wastewater[J]. Bioresource Technology, 2015, 193: 227-233. DOI:10.1016/j.biortech.2015.05.075
[17] Ren Y X, Yang L, Liang X. The characteristics of a novel heterotrophic nitrifying and aerobic denitrifying bacterium, Acinetobacter junii YB[J]. Bioresource Technology, 2014, 171: 1-9. DOI:10.1016/j.biortech.2014.08.058
[18] 金羽, 李建政, 任南琪, 等. 耐冷氨氧化功能菌群的富集及其对A2/O系统的生物强化[J]. 化工学报, 2013, 64(9): 3367-3372.
Jin Y, Li J Z, Ren N Q, et al. Domestication of a cold-adapted ammonia-oxidizing functional flora and its bioaugmentation on A2/O wastewater treatment process at low temperature[J]. CIESC Journal, 2013, 64(9): 3367-3372.
[19] 吴云, 杜小磊, 宋凯, 等. 生物接触氧化池悬浮填料流动特性数值模拟分析[J]. 化工学报, 2018, 69(7): 3242-3248.
Wu Y, Du X L, Song K, et al. Numerical simulation analysis of flow characteristics of suspended packing in biological contact oxidation tank[J]. CIESC Journal, 2018, 69(7): 3242-3248.
[20] 国家环境保护总局. 水和废水监测分析方法[M]. 第四版. 北京: 中国环境科学出版社, 2002.
[21] 符波, 廖潇逸, 丁丽丽, 等. 环境扫描电镜对废水生物样品形态结构的表征研究[J]. 中国环境科学, 2010, 30(1): 93-98.
Fu B, Liao X Y, Ding L L, et al. Application of ESEM in the visualization of microbial community of granule sludge and suspended carrier biofilm[J]. China Environmental Science, 2010, 30(1): 93-98.
[22] 吴鹏, 陈亚, 张婷, 等. 基于MBR不同种泥短程硝化启动的微生物群落结构分析[J]. 环境科学, 2018, 39(10): 4636-4643.
Wu P, Chen Y, Zhang T, et al. Microbial community characteristics of shortcut nitrification start-up in different MBR-inoculated sludges[J]. Environmental Science, 2018, 39(10): 4636-4643.
[23] 高艳辉, 赵天涛, 邢志林, 等. 铜离子对混合菌群降解三氯乙烯的影响与机制分析[J]. 生物工程学报, 2016, 32(5): 621-634.
Gao Y H, Zhao T T, Xing Z L, et al. Effects of copper on biodegradation mechanism of trichloroethylene by mixed microorganisms[J]. Chinese Journal of Biotechnology, 2016, 32(5): 621-634.
[24] 宿程远, 刘凡凡, 钟余, 等. 生态高负荷土地快速渗滤系统处理猪场废水的效能及微生态[J]. 环境科学, 2017, 38(10): 4271-4278.
Su C Y, Liu F F, Zhong Y, et al. Efficiency and microecology of a soil infiltration system with high hydraulic loading for the treatment of swine wastewater[J]. Environmental Science, 2017, 38(10): 4271-4278.
[25] Yang N, Zhan G Q, Li D P, et al. Performance and microbial community of a novel non-aeration-based up-flow bioelectrochemical filter (UBEF) treating real domestic wastewater[J]. Chemical Engineering Journal, 2018, 348: 271-280. DOI:10.1016/j.cej.2018.04.200
[26] 喻涌泉, 黄魏魏, 董建江, 等. 硝基还原假单胞菌吸附重金属镉的机理研究[J]. 中国环境科学, 2017, 37(6): 2232-2238.
Yu Y Q, Huang W W, Dong J J, et al. Study on the removal of Cd(Ⅱ) by Pseudomonas nitroreducens:biosorption characteristics and mechanism[J]. China Environmental Science, 2017, 37(6): 2232-2238. DOI:10.3969/j.issn.1000-6923.2017.06.030
[27] 黄翔峰, 朱其玮, 申昌明, 等. 剩余污泥超声提取液培养生物破乳菌Alcaligenes sp. S-XJ-1[J]. 中国环境科学, 2014, 34(2): 424-430.
Huang X F, Zhu Q W, Shen C M, et al. Cultivation of demulsifying bacteria Alcaligenes sp. S-XJ-1 using ultrasonic pretreated excess sludge[J]. China Environmental Science, 2014, 34(2): 424-430.
[28] 李亚平.入滇池河口沉积物中反硝化细菌的多样性及其脱氮性能的研究[D].昆明: 云南大学, 2015.
Li Y P. Diversity and nitrogen removal characteristic of denitrifying bacteria in the sediments of estuary around Dianchi Lake[D]. Kunming: Yunnan University, 2015. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10673-1015609240.htm
[29] Jeong D, Cho K, Lee C H, et al. Effects of salinity on nitrification efficiency and bacterial community structure in a nitrifying osmotic membrane bioreactor[J]. Process Biochemistry, 2018, 73: 132-141. DOI:10.1016/j.procbio.2018.08.008
[30] 丁阿强.生物电极脱氮及其机理研究[D].杭州: 浙江大学, 2018.
Ding A Q. Bio-cathode denitrification technology and its mechanism[D]. Hangzhou: Zhejiang University, 2018.
[31] 杨婷, 杨娅, 刘玉香. 异养硝化-好氧反硝化的研究进展[J]. 微生物学通报, 2017, 44(9): 2213-2222.
Yang T, Yang Y, Liu Y X. Research progress and challenges of heterotrophic nitrification-aerobic denitrification[J]. Microbiology China, 2017, 44(9): 2213-2222.
[32] Zhang S S, Sun X B, Wang X M, et al. Bioaugmentation with Diaphorobacter polyhydroxybutyrativorans to enhance nitrate removal in a poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate)-supported denitrification reactor[J]. Bioresource Technology, 2018, 263: 499-507. DOI:10.1016/j.biortech.2018.04.115
[33] 孙英杰, 杨强, 卞荣星, 等. 矿化垃圾生物反应器中的细菌多样性分析[J]. 环境工程, 2016, 34(3): 142-146.
Sun Y J, Yang Q, Bian R X, et al. Analysis on the bacterial diversity in a bioreactor for aged refuse[J]. Environmental Engineering, 2016, 34(3): 142-146.