环境科学  2019, Vol. 40 Issue (3): 1412-1418   PDF    
降温过程中生物膜CANON反应器的运行特征
付昆明, 廖敏辉, 周厚田, 付巢, 姜姗, 仇付国, 曹秀芹     
北京建筑大学环境与能源学院, 城市雨水系统与水环境省部共建教育部重点实验室, 中-荷污水处理技术研发中心, 北京 100044
摘要: 本文以低温高氨氮废水为着眼点,通过不断地调节运行工况,探讨降温过程中全程自养脱氮(CANON)工艺的运行特征,以探索出低温环境下进水NH4+-N浓度较高时,CANON工艺获得稳定短程硝化和良好脱氮效果的方法.结果表明:①相较于直接将生物膜CANON反应器的温度条件由中温转变为低温(30℃±1℃→19℃),逐步降温驯化更有利于脱氮功能菌适应低温环境,且每次降温的幅度应尽量减小,同时还应配合运行工况的调节;②温度经25 d逐步降低至19℃左右,18 d后又继续降至15℃左右,NH4+-N和TN去除率均能分别长期稳定在90%、70%以上,甚至当温度下降至12℃时,TN去除率与去除负荷仍能分别达到72.52%、0.78kg·(m3·d)-1;③降温过程中驯化生物膜CANON污泥时,应优先考虑短程硝化控制.可通过维持一定的剩余NH4+-N浓度并严格控制DO浓度,以抑制NOB的活性,从而获得稳定的短程硝化效果.
关键词: 全程自养脱氮(CANON)      温度      厌氧氨氧化(ANAMMOX)      氨氧化细菌      亚硝酸盐氧化细菌(NOB)      短程硝化     
Operation Characteristics of the Biofilm CANON Reactor During the Temperature Reduction Process
FU Kun-ming , LIAO Min-hui , ZHOU Hou-tian , FU Chao , JIANG Shan , QIU Fu-guo , CAO Xiu-qin     
Sino-Dutch R & D Centre for Future Wastewater Treatment, Key Laboratory of Urban Storm water System and Water Environment, School of Environment and Energy Engineering, Beijing University of Civil Engineering and Architecture, Beijing 100044, China
Abstract: The focus of this paper, was low temperature, high ammonia nitrogen wastewater. The operation characteristics of the biofilm CANON process during the temperature reduction process were determined, by continuously adjusting different operating conditions. The aim was to explore the methods needed for the CANON process to obtain stable shortcut nitrification and a good nitrogen removal effect, when the influent NH4+-N concentration is high and the temperature low. The results showed that, ① compared with the biofilm CANON reactor temperature changing from medium to low temperature directly (30℃±1℃→19℃), it was more conducive to adapt the nitrogen-removing bacteria to the low-temperature environment, while the temperature was gradually lowered. Moreover, the extent of each reduction should be minimized. Besides, the operating conditions should be adjusted to ensure the nitrogen removal effect. ② The temperature was gradually reduced to about 19℃ after 25 d, and then decreased to about 15℃ after another 18 d. The NH4+-N and TN removal rates could be respectively stable at 90% and 70% over a long period of time. The TN removal rate and removal load could still reach 72.52% and 0.78 kg·(m3·d)-1, respectively, even when the temperature dropped to 12℃. ③ When adapting biological CANON sludge during the temperature reduction process, shortcut nitrification should be given priority. A stable shortcut nitrification effect should be obtained by maintaining a certain concentration of residual NH4+-N, and by strictly controlling the DO concentration to restrain NOB activity.
Key words: completely autotrophic nitrogen removal over nitrite (CANON)      temperature      anaerobic ammonium oxidation(ANAMMOX)      ammonia-oxidizing bacteria      nitrite oxidizing bacteria(NOB)      shortcut nitrification     

目前, CANON工艺在处理污泥消化液等高氨氮废水方面具有广泛的应用前景[1], 其温度主要采用中温条件[2, 3].此外, 在城市污水处理厂应用主流厌氧氨氧化工艺时, 运行温度仍采用中温条件[(30±1)℃][4].可见, 温度为中温条件时, CANON工艺较容易实现稳定的短程硝化, 进而获得良好的脱氮效果.因此, 在处理水温呈季节性变化较大的废水时, 例如污水厂主流工艺的污水[5]或垃圾渗滤液[6], CANON工艺将面临短程硝化效果不稳定的困境.尤其是在处理污水厂主流工艺的污水时, NH4+-N浓度一般较低, 水温在冬季时也较低(5~20℃), CANON工艺中NOB的生长代谢不仅受游离氨(free ammonia, FA)的影响较小, 而且也不受温度的限制[7].

温度影响细菌的具体方式表现为, 影响酶催化反应速率和基质扩散速率[8].对于CANON工艺中主要脱氮功能菌来说:一方面, 温度达到25~35℃时, 氨氧化细菌(ammonia-oxidizing bacteria, AOB)的生长速率较亚硝酸盐氧化细菌(nitrite-oxidizing bacteria, NOB)高, 且可实现NOB的“自然淘洗”[9]; 另一方面, 就ANAMMOX菌的最适温度范围而言, 研究者普遍接受的是30~35℃[10].此外, 不同研究者的试验结果均表明, ANAMMOX菌受低温的影响较大[11].例如, Laureni等[12]的研究发现, 12.5℃时, ANAMMOX菌的活性相比29℃时下降了90%;周同等[13]的研究表明, 25~35℃时海洋厌氧氨氧化反应的活化能为26 kJ·mol-1, 而温度下降至10~25℃时, 海洋厌氧氨氧化反应的活化能升高了50 kJ·mol-1.因此, 低温环境下, AOB氧化NH4+-N产生的NO2--N可能不会被ANAMMOX菌及时消耗掉, NO2--N出现积累, 而这会对CANON工艺中短程硝化的稳定性构成威胁.

如果要将CANON工艺应用于处理低温废水, 应探究长期低温环境下CANON反应器中短程硝化和脱氮性能的稳定性与高效性.本文以低温高氨氮废水为着眼点, 以生物膜CANON污泥为接种污泥, 通过不断地调节进水负荷、曝气量、温度等运行工况, 探讨降温过程中生物膜CANON反应器的运行特征, 以探索出低温环境下进水NH4+-N浓度较高时, CANON反应器获得稳定短程硝化和良好脱氮效果的方法.

1 材料与方法 1.1 试验装置

本试验采用的反应器由有机玻璃制成, 内径为7 cm, 高度为1 m, 有效容积为3.5 L, 如图 1所示.反应器填料为内部有支撑的圆柱形改性聚乙烯填料, 侧边沿不同径向伸展许多尾翅用于增加填料的比表面积, 直径约10 mm, 高度约8 mm, 密度约为0.96 g·cm-3[14].反应器采用升流式进水方式, 通过水浴控制反应器内部温度, 控制反应器内pH为7.80~8.12.反应器底部安装圆柱形曝气头, 采用空气泵进行曝气并通过玻璃转子流量计控制流量.

1.进水箱;2.进水泵;3.空气泵;4.恒温加热棒;5.出水口;6.水浴箱;7.生物膜CANON反应器;8.生物膜CANON污泥 图 1 生物膜CANON反应器试验装置及工艺流程示意 Fig. 1 Experimental apparatus and process diagram of the biofilm CANON reactor

1.2 接种污泥与试验用水

接种的生物膜CANON污泥来自于实验室已稳定运行的改性聚乙烯填料CANON反应器, 该反应器的TN去除负荷最高可达2.52 kg·(m3·d)-1[14].

本试验用水采用人工配制的无机进水, 由自来水添加适量的NH4Cl、NaHCO3、NaH2PO4和1 mL·L-1微量元素浓缩液Ⅰ、1 mL·L-1微量元素浓缩液Ⅱ[15]组成, 反应器无机进水水质如表 1所示.

表 1 生物膜CANON反应器无机进水水质 Table 1 Inorganic water quality of the influent for the biofilm CANON reactor

1.3 分析项目及检测方法

各项氮素指标的监测方法参考文献[16]. NH4+-N:纳氏试剂比色法; NO2--N:N-(1-萘基)-乙二胺光度法; NO3--N:紫外分光光度法; TN按下式计算:TN=NH4+-N+NO2--N+NO3--N; FA浓度:参考文献[17]中的计算方法, 具体见式(1); pH值:Mettler Toledo Fivego F2 pH计; DO:Multi 3620 IDS溶解氧仪; 温度:水银温度计.

(1)

式中, c(NH4+-N)为污水中NH4+-N的浓度, mg·L-1; t为反应温度, ℃.

2 结果与分析

本试验开始前, 生物膜CANON反应器的温度始终保持在(30±1)℃.试验可主要分为直接低温驯化(1~15 d)、逐步降温驯化(17~41 d)、长期低温运行(42~70 d)这3个阶段.首先, 直接低温驯化时, 将温度维持在约19℃, 反应器的脱氮效果因低温影响急剧恶化后, 为恢复反应器内脱氮功能菌的活性, 7~15 d时温度恢复至中温条件[(30±1)℃].其次, 为实现ANAMMOX菌最终适应低温环境的目的, 试验采用逐步降温的驯化方式, 温度首先经11 d由26℃左右逐步下降至20℃左右后, 在27~41 d期间微幅升高至24℃左右.逐步降温的同时, 辅以适当工况的调节, 试验过程中主要的运行工况如图 2所示.最后, 温度再次下降至19℃左右, 18 d后温度又继续下降至15℃左右, 探究低温时CANON反应器短程硝化和脱氮性能的稳定性与高效性.

图 2 降温过程中生物膜CANON反应器进水流量、曝气量与温度的变化 Fig. 2 Variation of the influent inflow, aeration rate and temperature in the biofilm CANON reactor during the temperature reduction process

2.1 直接低温驯化阶段

1~4 d, 温度维持在约19℃, 平均进水负荷为2.11kg·(m3·d)-1.降温过程中生物膜CANON反应器各氮素指标的变化, 如图 3所示. 1~4 d, NH4+-N和TN的最高去除率分别为28.17%、4.52%, TN去除负荷最高仅为0.14 kg·(m3·d)-1.这表明AOB和ANAMMOX菌均受到了严重的抑制.

图 3 降温过程中生物膜CANON反应器内各氮素指标的变化 Fig. 3 Variation of each nitrogen species index in the biofilm CANON reactor during the temperature reduction process

此外, 1~4 d时, NO2--N出现积累现象, 最高达到59.81mg·L-1.这说明AOB受低温的冲击性影响较ANAMMOX菌小.这与Lotti等[18]的试验结果一致.分析其原因可能是, ANAMMOX菌对温度的敏感性较AOB强[19].刘文如等[20]的研究也发现, 在温度由20℃下降至10℃时, ANAMMOX污泥的活性下降至原来的18%, 而短程硝化颗粒污泥的活性只下降至原来的53%.

为恢复CANON反应器内脱氮功能菌的活性, 7~15 d时温度恢复至试验开始前的水平[(30±1)℃], 同时将TN平均进水负荷由2.11kg·(m3·d)-1调低至1.17kg·(m3·d)-1.由图 3可知, 恢复中温条件后, NH4+-N和TN去除率分别稳定在80%、60%以上, TN去除负荷逐渐稳定在1.00kg·(m3·d)-1左右, 这说明反应器的脱氮性能转好. δ(NO3--N)/δ(TN)平均值为0.116, 接近于理论值0.127[21].表明CANON反应器中短程硝化效果较为稳定.可见, 1~4 d时的低温冲击并未对反应器造成明显影响.

2.2 逐步降温驯化阶段

由1~4 d的试验结果可知, 如直接从低温开始驯化生物膜CANON污泥, 反应器的脱氮效果较差.因此, 在17~41 d期间, 试验尝试采用逐步降温的驯化方式, 同时配合运行工况的调节, 以使反应器内的脱氮功能菌逐渐适应低温环境.其中, 17~20 d时温度下降至26℃左右, 平均进水负荷为1.80kg·(m3·d)-1; 21~23 d时温度继续下降至20℃左右, 平均进水负荷为1.88kg·(m3·d)-1. 27~41 d, 降温的幅度减小, 温度升高至24℃左右, 平均进水负荷下调至1.76kg·(m3·d)-1.

图 3可知, 在逐渐降温的过程中, NH4+-N和TN去除率均主要呈下降趋势, 23 d时分别降低至69.64%、17.02%.此外, NO2--N在逐渐降温的过程中迅速大量积累, 23 d时达到最大值216.09mg·L-1, 说明ANAMMOX菌的活性大幅下降, 无法高效地完成脱氮过程.就NO3--N而言, 在逐渐降温的过程中, NO3--N的变化呈先上升后下降的趋势, 21 d时达到峰值35.38mg·L-1, 23 d时降低至9.77mg·L-1.另一方面, δ(NO3--N)/δ(TN)在逐渐降温的过程中也主要呈下降趋势, 且均小于理论值0.127.可见, 反应器尽管存在脱氮效果不佳的问题, 但其短程硝化性能较稳定, ANAMMOX菌仍然占据竞争NO2--N的优势地位.

温度升高至24℃左右后, NH4+-N和TN去除率尽管稍有波动, 但总体趋势相较直接低温驯化时有了根本性的好转, 27~41 d期间NH4+-N和TN平均去除率分别为81.47%、60.46%.此外, NO2--N积累量明显减小, 平均值为44.47mg·L-1.由此也可看出, 温度升高后, ANAMMOX菌的活性有所恢复. NO3--N浓度在温度小幅升高后呈波动性变化趋势, 且相较之前有了较大的提升, 平均值为33.31mg·L-1.另一方面, 温度升高后, δ(NO3--N)/δ(TN)逐渐稳定在0.127以上.由此可见, 减小降温的幅度后, NOB的活性得到增强.

2.3 长期低温运行阶段

基于前两个阶段的试验结果, 在长期低温运行阶段, 温度首先在42~59 d期间再次下降至19℃左右, 平均进水负荷为1.67kg·(m3·d)-1. 60~70 d, 温度继续下降至15℃左右, 平均进水负荷下调至1.27kg·(m3·d)-1.

图 3所示, 在长期低温运行阶段, NH4+-N和TN去除率分别逐渐稳定在90%、70%以上, 甚至当温度在67 d下降至12℃时, TN去除率与去除负荷仍能分别达到72.52%、0.78kg·(m3·d)-1.显然, 温度再次下降至低值时, ANAMMOX菌仍能高效地完成脱氮过程, 这与直接低温驯化时有着明显的不同.有研究表明, 这种“不同”源于ANAMMOX菌对低温环境已具备了一定的适应能力, 而非ANAMMOX菌数量的增多所致.例如, Laureni等[12]的研究发现, 12.5℃时, ANAMMOX菌的最小世代时间较29℃时延长了61 d. Reino等[22]的试验结果表明, 在没有排泥的前提下, 温度由22℃经过420 d逐步下降最后稳定在11℃后, 厌氧氨氧化UASB反应器内ANAMMOX菌种属的总相对丰度逐渐下降, 而在分别处理低浓度合成废水及投加NO2--N后的实际市政污水时, 反应器均能取得较好的脱氮效果.

此外, 相较前两个阶段而言, NO2--N积累量在长期低温运行阶段有所降低, 平均浓度为36.88mg·L-1.就NO3--N而言, 长期低温运行阶段的NO3--N浓度呈快速升高趋势, 最高达63.79mg·L-1.可见, 在长期低温运行阶段, 除CANON反应产生少量NO3--N[23]外, 大部分NO3--N是由NOB利用NO2--N转化而来的.

另一方面, 42~55 d时δ(NO3--N)/δ(TN)的平均值为0.126, 非常接近于理论值0.127.而60~70 d时δ(NO3--N)/δ(TN)处于较高水平, 平均值为0.152.这与NOB的活性在长期低温运行阶段逐渐增强相符.说明CANON反应器中短程硝化有持续恶化的趋势.

3 讨论

对比分析直接低温驯化、逐步降温驯化、长期低温运行3个阶段的试验结果可知:第一, 温度直接由(30±1)℃降低至19℃时, 反应器内脱氮功能菌受到了严重的抑制, NO2--N出现积累; 第二, 在逐步降温的过程中(30℃±1℃→26℃±1℃→22℃±1℃), 尽管NO2--N出现大量积累, 但CANON反应器的短程硝化性能较稳定; 第三, 将降温的幅度减小后(24±2)℃, 反应器的脱氮效果相较直接低温驯化时有了根本性的好转, NO2--N的积累量明显减小; 第四, 温度继续下降后(约19℃→约15℃), NO2--N积累量进一步减小, 反应器取得了本次试验中最好的脱氮效果, 而短程硝化面临恶化的风险.由此可见, 驯化生物膜CANON污泥的温度条件直接由中温转变为低温时, 不利于反应器在低温环境下取得较好的脱氮效果.而通过逐步降温的驯化方式, 每次较小幅度地降温, 同时配合运行工况的调节, 可实现ANAMMOX菌逐渐适应低温环境的目的.

值得注意的是, ANAMMOX菌的部分种属本身就具备在低温环境下生长的潜力.有研究表明[24], 北极海洋沉积污泥中, ANAMMOX菌的最适温度低于15℃, 甚至在-1.3℃的温度条件下仍保持着一定的活性. Hendrickx等[24]直接在10℃环境下培养ANAMMOX污泥, 反应器内主要种属为 Candidatus Brocadia fulgida.另外, 有研究者发现, 驯化的温度条件由中温转变为低温时, ANAMMOX菌的主要种属发生了变化.例如, De等[25]的研究表明, 进水NH4+-N浓度为25.9mg·L-1, 持续维持温度为30℃的ANAMMOX反应器内, 主要种属始终为 Candidatus Brocadia, 而温度经293 d由30℃逐渐下降至10℃的ANAMMOX反应器, 主要种属从 Candidatus Brocadia 转移至 Candidatus Kuenenia. Yang等[26, 27]的研究发现, 进水NH4+-N浓度为44.5mg·L-1左右, 当CANON反应器的温度条件由(32±3)℃转变为(25±1)℃, 120 d后, ANAMMOX菌的含量由6.6×1011 copies·L-1下降至3.2×1011 copies·L-1, 主要种属也从 Candidatus Brocadia 转移至 Candidatus Kuenenia.由此可见, ANAMMOX菌的部分种属对低温环境具有一定的倾向性, 但这仍需进一步的研究.

此外, 在整个驯化的过程中, 除7~15 d时温度恢复至中温条件(30±1)℃外, 低温条件下NO2--N的积累量随ANAMMOX菌活性的高低而波动变化.文献也报道了类似情况.例如, Persson等[28]的研究结果表明, 16℃和13℃时, 移动床式生物膜CANON反应器的TN去除负荷分别为0.81kg·(m3·d)-1和0.55kg·(m3·d)-1, 而10℃时TN去除负荷不稳定, 平均值仅为0.17kg·(m3·d)-1, NO2--N积累峰值为200mg·L-1.李祥等[29]的试验结果表明, 温度降低至15℃以下时, 厌氧氨氧化反应器的TN去除负荷最低降至0.55kg·(m3·d)-1, 并伴随NO2--N大量积累, NO2--N积累峰值为150mg·L-1.宋成康等[30]的研究发现, 温度为(26±7)℃时, 厌氧氨氧化反应器的TN去除负荷稳定在0.40kg·(m3·d)-1左右, 温度降低至15℃时出现了NO2--N大量积累, 最高达到107.49mg·L-1, 温度继续下降至10℃时反应器面临崩溃的风险.可见, 在ANAMMOX菌适应低温环境的过程中, NO2--N易发生积累, 积累的高浓度NO2--N又将进一步抑制ANAMMOX菌的活性, 从而延长ANAMMOX菌适应低温环境的过程.

就NO3--N而言, 整个试验过程中NO3--N浓度总体上一直呈升高趋势, 尤其是在长期低温运行阶段, NO3--N浓度的升高明显较前2个阶段要快.其他研究者也发现了类似情况.例如, Liu等[31]的研究发现, 相较30℃条件下培养的CANON污泥而言, (20±3)℃条件下培养的CANON污泥中, NOB两个主要种属的含量均有所升高. Gonzalez-Martinez等[32]也注意到(20±5)℃条件下培养CANON污泥时, NOB的相对丰度会增大. Liu等[33]在长期处于(23±3)℃的CANON反应器内检测到了Nitrobacter, 而在长期处于(30±2)℃的CANON反应器内并未发现.可见, 低温环境有利于CANON反应器中NOB的生长代谢活动.

另一方面, 在逐步降温阶段和长期低温运行阶段中, δ(NO3--N)/δ(TN)均出现了高于理论值0.127的情况, 表明CANON反应器中短程硝化有持续恶化的趋势.由此可见, 降温过程中驯化生物膜CANON污泥时, 应优先考虑短程硝化控制.

降温过程中生物膜CANON反应器内FA浓度及DO的变化, 如图 4所示.可以看出, 在直接低温驯化时, 由于AOB受到了严重的抑制, 大量的NH4+-N未得到去除, 从而形成了高浓度的FA, 平均值为15.62mg·L-1.在逐步降温驯化阶段, FA浓度随AOB活性的增强而减小.例如21 d时, NH4+-N去除率达到95.23%, FA浓度仅为0.23mg·L-1, 而在39 d时, NH4+-N去除率仅为57.85%, FA浓度高达9.53mg·L-1.在长期低温运行阶段, NH4+-N去除率稳定在90%以上, FA浓度处于较低水平, 平均值仅为0.34mg·L-1.就FA对NOB抑制的浓度范围而言, Anthonisen等[17]的结论最为经典, 其研究表明抑制NOB的FA浓度范围为0.1~1mg·L-1.因此, 引起降温过程中NOB活性逐渐增强的主要原因是, 脱氮功能菌逐渐适应低温环境后, NH4+-N被大量消耗, 加之低温影响, 致使FA浓度下降, NOB受FA的抑制得到有效缓解.由此可见, 低温环境下, CANON反应器实现较好脱氮性能的同时, 应维持一定浓度的剩余NH4+-N, 以抑制NOB的活性.

图 4 降温过程中生物膜CANON反应器内FA浓度及DO的变化 Fig. 4 Variation of the FA concentrations and DO in the biofilm CANON reactor during the temperature reduction process

除FA外, NOB活性的增强还与DO有关.例如, 付昆明等[34]在探讨主流厌氧氨氧化工艺的运行优化时发现, NH4+-N浓度低于100mg·L-1, 如仍然维持NH4+-N浓度较高时的DO水平, 导致NOB活性得到增强的同时, 还将部分抑制生物膜内ANAMMOX菌的活性.由图 4可知, 整个试验过程中, DO处于较高水平.其中, 直接低温驯化和逐步降温驯化两个阶段的DO基本保持在3mg·L-1以上, 长期低温运行阶段的DO稳定在3.00mg·L-1左右.而有研究表明[35], AOB、NOB氧的半饱和常数分别为0.3mg·L-1、1.1mg·L-1.因此, 低温环境下, 除维持一定浓度的剩余NH4+-N外, 还应严格控制DO浓度以抑制NOB的活性.

4 结论

(1) 驯化生物膜CANON污泥的温度条件直接由中温转变为低温(30℃±1℃→19℃)时, 不利于反应器在低温环境下取得较好的脱氮效果.而通过逐步降温的驯化方式, 同时配合运行工况的调节, 可实现CANON反应器中脱氮功能菌逐渐适应低温环境的目的.

(2) 温度经25 d逐步降低至19℃左右, 18 d后又继续降至15℃左右, NH4+-N和TN去除率均能分别长期稳定在90%、70%以上, 甚至当温度下降至12℃时, TN去除率与去除负荷仍能分别达到72.52%、0.78kg·(m3·d)-1.

(3) 降温过程中驯化生物膜CANON污泥时, 应优先考虑短程硝化控制.

参考文献
[1] Ahn Y H, Choi H C. Autotrophic nitrogen removal from sludge digester liquids in upflow sludge bed reactor with external aeration[J]. Process Biochemistry, 2006, 41(9): 1945-1950. DOI:10.1016/j.procbio.2006.04.006
[2] 郝晓地, 程慧芹, 胡沅胜. 碳中和运行的国际先驱奥地利strass污水厂案例剖析[J]. 中国给水排水, 2014, 30(22): 1-5.
Hao X D, Cheng H Q, Hu Y S. International pioneer of carbon-neutral operation of wastewater treatment:A case study at strass in Austria[J]. China Water & Wastewater, 2014, 30(22): 1-5.
[3] 郝晓地, Van Loosdrecht M. 荷兰鹿特丹DOKHAVEN污水处理厂介绍[J]. 给水排水, 2003, 29(10): 19-25.
Hao X D, Van Loosdrecht M. DOKHAVEN wastewater treatment plant in rotterdam[J]. Water & Wastewater Engineering, 2003, 29(10): 19-25. DOI:10.3969/j.issn.1002-8471.2003.10.007
[4] Cao Y S, Hong K B, Zhou Y, 等. 新加坡最大回用水处理厂污水短程硝化厌氧氨氧化脱氮工艺[J]. 北京工业大学学报, 2015, 41(10): 1441-1454.
Cao Y S, Hong K B, Zhou Y, et al. Mainstream partial nitritation/anammox nitrogen removal process in the largest water reclamation plant in Singapore[J]. Journal of Beijing University of Technology, 2015, 41(10): 1441-1454. DOI:10.11936/bjutxb2014120074
[5] 陈珺, 王洪臣, Wett B. 城市污水处理工艺迈向主流厌氧氨氧化的挑战与展望[J]. 给水排水, 2015, 51(10): 29-34.
Chen J, Wang H C, Wett B. Challenge and aspect of municipal wastewater treatment going for mainstream deammonification[J]. Water & Wastewater Engineering, 2015, 51(10): 29-34. DOI:10.3969/j.issn.1002-8471.2015.10.009
[6] Wang Z, Peng Y Z, Lei M, et al. Continuous-flow combined process of nitritation and ANAMMOX for treatment of landfill leachate[J]. Bioresource Technology, 2016, 214: 514-519. DOI:10.1016/j.biortech.2016.04.118
[7] 左早荣, 付昆明, 仇付国, 等. CANON工艺的研究现状及面临困难分析[J]. 水处理技术, 2013, 39(9): 15-19.
Zuo Z R, Fu K M, Qiu F G, et al. Analysis of the research status and difficulties of CANON process[J]. Technology of Water Treatment, 2013, 39(9): 15-19. DOI:10.3969/j.issn.1000-3770.2013.09.004
[8] Grady Jr C P R, Daigger G T, Lim H C.废水生物处理[M]. (第二版).张锡辉, 刘勇弟, 译.北京: 化学工业出版社, 2003.
[9] Hellinga C, Schellen A A J C, Mulder J W, et al. The sharon process:An innovative method for nitrogen removal from ammonium-rich waste water[J]. Water Science and Technology, 1998, 37(9): 135-142. DOI:10.2166/wst.1998.0350
[10] De Almeida Fernandes L, Pereira A D, Leal C D, et al. Effect of temperature on microbial diversity and nitrogen removal performance of an anammox reactor treating anaerobically pretreated municipal wastewater[J]. Bioresource Technology, 2018, 258: 208-219. DOI:10.1016/j.biortech.2018.02.083
[11] Tomaszewski M, Cema G, Ziembińska-Buczyńska A. Influence of temperature and pH on the anammox process:A review and meta-analysis[J]. Chemosphere, 2017, 182: 203-214. DOI:10.1016/j.chemosphere.2017.05.003
[12] Laureni M, Weissbrodt D G, Szivák I, et al. Activity and growth of anammox biomass on aerobically pre-treated municipal wastewater[J]. Water Research, 2015, 80: 325-336. DOI:10.1016/j.watres.2015.04.026
[13] 周同, 于德爽, 李津, 等. 温度对海洋厌氧氨氧化菌脱氮效能的影响[J]. 环境科学, 2017, 38(5): 2044-2051.
Zhou T, Yu D S, Li J, et al. Effect of temperature on nitrogen removal performance of marine anaerobic ammonium oxidizing bacteria[J]. Environmental Science, 2017, 38(5): 2044-2051.
[14] 付昆明, 周厚田, 苏雪莹, 等. 生物膜短程硝化系统的恢复及其转化为CANON工艺的过程[J]. 环境科学, 2017, 38(4): 1536-1543.
Fu K M, Zhou H T, Su X Y, et al. Short-cut nitrification recovery and its transformation into CANON process in a biofilm reactor[J]. Environmental Science, 2017, 38(4): 1536-1543.
[15] Van De Graaf A A, De Bruijn P, Robertson L A, et al. Autotrophic growth of anaerobic ammonium-oxidizing micro-organisms in a fluidized bed reactor[J]. Microbiology, 1996, 142(8): 2187-2196. DOI:10.1099/13500872-142-8-2187
[16] 国家环境保护总局. 水和废水监测分析方法[M]. (第四版). 北京: 中国环境科学出版社, 2002: 258-415.
[17] Anthonisen A C, Loehr R C, Prakasam T B, et al. Inhibition of nitrification by ammonia and nitrous acid[J]. Journal-Water Pollution Control Federation, 1976, 48(5): 835-852.
[18] Lotti T, Kleerebezem R, Van Loosdrecht M C M. Effect of temperature change on anammox activity[J]. Biotechnology and Bioengineering, 2015, 112(1): 98-103.
[19] 张杰, 付昆明, 曹相生, 等. 序批式生物膜CANON工艺的运行与温度的影响[J]. 中国环境科学, 2009, 29(8): 850-855.
Zhang J, Fu K M, Cao X S, et al. Performance of CANON process in a sequencing batch biofilm reactor and influence of temperarure[J]. China Environmental Science, 2009, 29(8): 850-855. DOI:10.3321/j.issn:1000-6923.2009.08.013
[20] 刘文如, 杨殿海, 沈耀良, 等. 主流条件下两级式PN-ANAMMOX工艺的高效能脱氮过程[J]. 环境科学, 2018, 39(12): 5580-5586.
Liu W R, Yang D H, Shen Y L, et al. High-rate nitrogen removal in a two-stage partial nitritation-ANAMMOX process at mainstream conditions[J]. Environmental Science, 2018, 39(12): 5580-5586.
[21] 付昆明, 张杰, 曹相生, 等. CANON反应器运行稳定性及温度冲击的影响[J]. 环境科学, 2012, 33(10): 3507-3512.
Fu K M, Zhang J, Cao X S, et al. Performance stability of CANON reactor and temperature impact[J]. Environmental Science, 2012, 33(10): 3507-3512.
[22] Reino C, Suárez-Ojeda M E, Pérez J, et al. Stable long-term operation of an upflow anammox sludge bed reactor at mainstream conditions[J]. Water Research, 2017, 128: 331-340.
[23] Sliekers A O, Derwort N, Gomez J L C, et al. Completely autotrophic nitrogen removal over nitrite in one single reactor[J]. Water Research, 2002, 36(10): 2475-2482. DOI:10.1016/S0043-1354(01)00476-6
[24] Hendrickx T L, Kampman C, Zeeman G, et al. High specific activity for anammox bacteria enriched from activated sludge at 10℃[J]. Bioresource Technology, 2014, 163: 214-221. DOI:10.1016/j.biortech.2014.04.025
[25] De Cocker P, Bessiere Y, Hernandez-Raquet G, et al. Enrichment and adaptation yield high anammox conversion rates under low temperatures[J]. Bioresource Technology, 2017, 250: 505-512.
[26] Yang Y D, Zhang L, Cheng J, et al. Microbial community evolution in partial nitritation/anammox process:From sidestream to mainstream[J]. Bioresource Technology, 2018, 251: 327-333. DOI:10.1016/j.biortech.2017.12.079
[27] Yang Y D, Zhang L, Han X Y, et al. Determine the operational boundary of a pilot-scale single-stage partial nitritation/anammox system with granular sludge[J]. Water Science & Technology, 2016, 73(9): 2085-2092.
[28] Persson F, Sultana R, Suarez M, et al. Structure and composition of biofilm communities in a moving bed biofilm reactor for nitritation-anammox at low temperatures[J]. Bioresource Technology, 2014, 154: 267-273. DOI:10.1016/j.biortech.2013.12.062
[29] 李祥, 黄勇, 郑宇慧, 等. 温度对厌氧氨氧化反应器脱氮效能稳定性的影响[J]. 环境科学, 2012, 33(4): 1288-1292.
Li X, Huang Y, Zheng Y H, et al. Effect of temperature on stability of nitrogen removal in the ANAMMOX reactor[J]. Environmental Science, 2012, 33(4): 1288-1292.
[30] 宋成康, 王亚宜, 韩海成, 等. 温度降低对厌氧氨氧化脱氮效能及污泥胞外聚合物的影响[J]. 中国环境科学, 2016, 36(7): 2006-2013.
Song C K, Wang Y Y, Han H C, et al. Effect of decreasing temperature on the performance and extracellular polymer substance of anaerobic ammonia oxidation sludge[J]. China Environmental Science, 2016, 36(7): 2006-2013. DOI:10.3969/j.issn.1000-6923.2016.07.015
[31] Liu T, Li D, Zhang J, et al. Effect of temperature on functional bacterial abundance and community structure in CANON process[J]. Biochemical Engineering Journal, 2016, 105: 306-313. DOI:10.1016/j.bej.2015.10.001
[32] Gonzalez-Martinez A, Rodriguez-Sanchez A, Garcia-Ruiz M J, et al. Performance and bacterial community dynamics of a CANON bioreactor acclimated from high to low operational temperatures[J]. Chemical Engineering Journal, 2016, 287: 557-567. DOI:10.1016/j.cej.2015.11.081
[33] Liu T, Li D, Zeng H P, et al. Distribution and genetic diversity of functional microorganisms in different CANON reactors[J]. Bioresource Technology, 2012, 123: 574-580. DOI:10.1016/j.biortech.2012.07.114
[34] 付昆明, 付巢, 李慧, 等. 主流厌氧氨氧化工艺的运行优化及其微生物的群落变迁[J]. 环境科学, 2018, 39(12): 5596-5604.
Fu K M, Fu C, Li H, et al. Optimization of mainstream anaerobic ammonia oxidation process and its changes of microbial community[J]. Environmental Science, 2018, 39(12): 5596-5604.
[35] Wiesmann U. Biological nitrogen removal from wastewater[J]. Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology, 1994, 51: 114-154.