环境科学  2017, Vol. 38 Issue (4): 1675-1682   PDF    
褪黑素对水稻幼芽镍胁迫的缓解作用
刘仕翔1,2 , 黄益宗1 , 罗泽娇2 , 黄永春1 , 蒋航1     
1. 农业部环境保护科研监测所, 天津 300191;
2. 中国地质大学 (武汉) 环境学院, 武汉 430074
摘要: 研究添加外源褪黑素对水稻幼芽Ni胁迫的缓解作用.结果表明,较低浓度Ni(10 μmol·L-1、50 μmol·L-1)胁迫对水稻幼芽根系生长影响不大,而较高浓度Ni(100~1000 μmol·L-1)胁迫显著地抑制水稻根系的生长.与CK处理相比,100~1000 μmol·L-1 Ni胁迫导致水稻总根长降低63.3%~98.0%,根表面积降低56.9%~96.3%.褪黑素的添加能明显地促进Ni胁迫下水稻幼芽的生长,尤其是对幼芽的根系生长促进作用更明显.当Ni胁迫浓度为100 μmol·L-1时,两个水稻品种总根长相较于无Ni胁迫的对照组降低了58.4%~83.8%,在添加10 μmol·L-1褪黑素处理后,水稻总根长相较于无Ni胁迫的对照组仅降低了8.7%~29.1%.添加外源褪黑素导致Ni胁迫下水稻幼芽的O2产生速率和相对电导率显著降低,CAT活性和可溶性蛋白含量显著提高.与100 μmol·L-1 Ni胁迫处理相比,添加10 μmol·L-1褪黑素能显著地降低两种水稻品种O2产生速率43.2%~50.2%、相对电导率25.7%~31.6%,提高CAT活性21.9%~33.7%、可溶性蛋白含量82.6%~84.6%.褪黑素可以有效地缓解Ni胁迫对水稻幼芽的毒害作用.
关键词: 水稻           褪黑素      抗氧化系统      毒害     
Alleviation Effects of Exogenous Melatonin on Ni Toxicity in Rice Seedings
LIU Shi-xiang1,2 , HUANG Yi-zong1 , LUO Ze-jiao2 , HUANG Yong-chun1 , JIANG Hang1     
1. Agro-Environmental Protection Institute, Ministry of Agriculture, Tianjin 300191, China;
2. School of Environmental Studies, China University of Geosciences, Wuhan 430074, China
Abstract: The alleviation effect of exogenous melatonin (MT) on Ni toxicity in rice seedings was investigated. The results showed that low concentration of Ni stress (10, 50 μmol·L-1) had little effect on the growth of root of rice seedings, while higher concentration of Ni stress (100-1000 μmol·L-1) significantly inhibited the growth of rice root. Compared with the control treatment, the addition of 100 and 1000 μmol·L-1 Ni would decrease the total length and surface area of root by 63.3%-98.0% and 56.9%-96.3%, respectively. The results showed that addition of exogenous melatonin had a positive effect on the growth of rice seedings under Ni stress. This kind of positive effect was even more obvious in the root of rice seedings. The total length of rice root decreased by 58.4%-83.8% at Ni concentration of 100 μmol·L-1, whereas it decreased by only 8.7%-29.1% when 100 μmol·L-1 Ni and 10 μmol·L-1 MT were added, compared with the control treatment. The addition of exogenous melatonin had significant alleviation effects on oxidative stress in rice seedings caused by Ni. Compared with the 100 μmol·L-1Ni treatment, addition of 10 μmol·L-1 exogenous MT could significantly decrease the production rate of O2 by 43.2%-50.2% and the relative electrolytic leakage by 25.7%-31.6%, whereas increase the activities of CAT by 21.9%-33.7% and the soluble protein content by 82.6%-84.6%. The results suggested that application of exogenous melatonin could effectively alleviate the toxic effects of Ni on rice seedings.
Key words: rice      Ni      melatonin (MT)      antioxidant system      toxicity     

随着工农业生产的迅速发展,污染物在环境中的不断累积,导致土壤环境污染日益严重[1~3],尤其是土壤重金属污染因其高富集、难降解、毒性强等特点而越来越被人们所关注.众所周知有些重金属是植物所必需营养元素,而多数为植物非必需元素,所有的重金属元素当浓度超过某一阈值,都会对植物产生毒害作用.重金属胁迫将导致植物体代谢功能紊乱,生长发育受影响,严重时甚至导致植物死亡.镍 (Ni) 是一种重金属元素,它是植物必需的微量元素,但当环境中Ni含量超过一定浓度就会对植物体产生毒害作用[4].据2014年环保部和国土资源部联合发布的全国土壤污染状况调查公报显示,无机污染物指标中,Ni超标率为4.8%,仅次于Cd的7.0%,是我国耕地主要污染物之一[5]. Ni胁迫对植物的毒害作用已有较多报道,Ni毒害表现为抑制种子萌发、影响幼苗根和茎叶生长、导致植物体内活性氧代谢失衡、降低作物产量[6, 7],因此如何防治Ni胁迫对植物的毒害具有十分重要的现实意义.

褪黑素 (melatonin,MT) 又名褪黑激素,是一种结构简单的小分子量分子,分子式为C13N2H16O2,相对分子质量232.17,熔点为116~118℃.褪黑素广泛存在于动植物体内,具有亲水和亲脂双重性质,能自由进出细胞.早期褪黑素的研究主要集中在哺乳动物,有研究发现MT与生物的个体发育、生殖、中枢神经等调节有关[8].随着检测技术的进步,人们已经在许多植物中发现褪黑素.有研究表明褪黑素对植物逆境胁迫有着显著的缓解作用[9],这些研究主要集中在植物抵御干旱[10]、低温[11]、高盐[12]、UV辐射[13]、化学胁迫[14]等方面.褪黑素不仅可以作为一种自由基清除剂,还可以通过提高抗氧化系统酶活性来抑制活性氧产生,提高植物抵御各种环境胁迫.包宇等[15]研究发现褪黑素添加可有效缓解番茄幼苗低温胁迫,与对照组相比,番茄叶片的SOD、POD、CAT等抗氧化酶活性均有一定程度的提高,膜脂过氧化程度降低.有研究报道在重金属胁迫下,植物体内褪黑素含量有明显的升高,这暗示内源褪黑素产生是植物应对逆境的一种生理反应[16].笔者最近的研究表明添加褪黑素可缓解Cd胁迫下水稻的种子萌发,促进水稻幼苗生长[17],但是褪黑素在植物Ni胁迫的影响情况还未见报道.本实验以水稻为材料,研究褪黑素对Ni胁迫下水稻幼芽生长的影响,以期为农业生产中作物Ni毒害防治提供科学依据.

1 材料与方法 1.1 材料

水稻品种为早稻潭两优83和晚稻T2优369(以下以X83和X369表示).选取饱满的水稻种子,在实验前均用3% NaClO浸泡消毒10 min,去离子水反复冲洗4~5遍.

1.2 实验设计

Ni胁迫浓度的筛选:将消毒洗净后的水稻种子置于培养皿中浸种1 d,挑选整齐露白的种子置于铺有一层滤纸的9 cm培养皿中,每盘20粒,摆好种子后向培养皿中加入8 mL Ni处理液 (7个处理浓度分别为0、10、50、100、200、500、1 000 μmol·L-1),每个处理重复3次,Ni以Ni (NO3)2·6H2O形式加入.将培养皿放置在28℃生化培养箱中暗培养,记录每个培养皿重量,并用称重法补充蒸发的水分.处理4~5 d后取样.

MT缓解水稻Ni胁迫浓度筛选:将消毒洗净后的水稻种子置于培养皿中浸种1 d,挑选整齐露白的种子置于铺有一层滤纸的9 cm培养皿中,每盘20粒,摆好种子后向培养皿中加入8 mL处理液.处理液设置7个MT浓度 (CK1、CK2、1、5、10、50、100 μmol·L-1),Ni处理浓度为100 μmol·L-1.每个处理重复3次.其中,CK1表示正常生长的水稻幼芽,无Ni胁迫处理,未添加褪黑素;CK2表示水稻幼芽仅受100 μmol·L-1 Ni胁迫处理,而未添加褪黑素.将培养皿放置在28℃生化培养箱中暗培养,记录每个培养皿重量,并用称重法补充蒸发的水分.处理4~5 d后取样.

MT缓解水稻Ni胁迫实验:将消毒洗净后的水稻种子置于培养皿中浸种1 d,挑选整齐露白的种子置于育苗盆中,摆好种子后向育苗盆中加入等量处理液,使得处理液刚好接触种子.设置4个处理:CK、100 μmol·L-1 Ni、10 μmol·L-1MT、100 μmol·L-1 Ni+10 μmol·L-1 MT.每个处理重复3次.将育苗盆放置在28℃生化培养箱中暗培养,记录每个育苗盆重量,并用称重法补充蒸发的水分.处理4~5 d后取样.

1.3 测定项目与方法 1.3.1 生长指标测定

培养4~5 d后测定水稻幼芽的根长、芽长、根鲜重和芽鲜重,其中芽鲜重、根鲜重按每10粒计算.

1.3.2 生理指标测定

超氧阴离子产生速率、可溶性蛋白含量、CAT活性和相对电导率的测定均参考文献[18]中的方法.主要测定步骤如下所述.

取0.5 g幼芽,用10 mL提取液 (pH=7.0的50 mmol·L-1磷酸钾缓冲液,其中包含1 mmol·L-1 EDTA,1% PVP-30) 进行冰浴研磨,随后提取液在16 000 r·min-1、4℃下离心15 min.取上清液进行后续测定.

可溶性蛋白含量选用考马斯亮蓝法测定:吸取0.1 mL样品提取液,加入5 mL考马斯亮蓝G-250试剂,摇匀静置10 min后测定595 nm处吸光值,通过标准曲线,换算成样品中可溶性蛋白含量. CAT活性测定使用分光光度法,以每分钟减少0.1为1个H2O2活性单位 (U),在求得每克鲜样中CAT活性后,换算成CAT比活力. O2产生速率使用羟胺氧化法.电导率用电导仪进行测定,将0.5 g洗净、拭干的样品置于烧杯中,加入20 mL去离子水后静置4 h,用手持电导仪 (梅特勒SG3) 测定电导值R1,置于沸水中煮15 min,冷却至室温后测外渗液电导值R2,相对电导率=R1/R2×100%.

采用根系扫描仪 (Epson Expression 10000XL) 对水稻根系进行扫描,并用WinRhizo根系分析软件进行根形态指标分析.

1.4 数据处理

本实验数据采用Origin 9.0和SPSS 19统计分析软件进行分析及差异显著性检验.对不同处理数据进行单因素方差分析 (ANOVA) 和Duncan多重比较,数据以平均值±标准差表示.

2 结果与分析 2.1 不同浓度Ni对水稻幼芽的胁迫作用

表 1为不同浓度Ni对水稻幼芽生长的影响,从表中可以看出高浓度Ni对水稻幼芽有明显的胁迫作用 (P < 0.05),而低浓度Ni对水稻幼芽无明显毒害作用.根系扫描结果显示,与对照组相比,当Ni胁迫浓度为100 μmol·L-1时,总根长、根表面积等指标降幅均超过50%.以X83为例,与对照处理相比,10 μmol·L-1和50 μmol·L-1 Ni对水稻根系生长未表现出显著差异 (P>0.05).与对照处理相比,100、200、500和1 000 μmol·L-1 Ni胁迫对水稻X83根系生长有显著负面影响 (P < 0.05),其对水稻总根长分别降低了63.3%、78.4%、95.8%和98.0%,对根表面积分别降低了56.9%、71.3%、94.7%和96.3%.不同浓度Ni对X369根系生长的影响与X83相似,均在100 μmol·L-1 Ni时开始出现明显胁迫症状,因此选用该浓度作为下阶段实验Ni胁迫浓度.

表 1 不同浓度Ni胁迫对水稻幼芽根系形态相关参数的影响1) Table 1 Effects of Ni stress on rice root parameters

2.2 不同浓度MT对水稻幼芽Ni胁迫的缓解作用

表 2为不同MT添加对水稻幼芽Ni胁迫的影响.从中可以看出当添加褪黑素浓度为5 μmol·L-1和10 μmol·L-1时,对X83和X369的缓解效果最为明显 (P < 0.05),而较低浓度褪黑素 (1 μmol·L-1) 和较高浓度褪黑素 (50 μmol·L-1和100 μmol·L-1) 对Ni胁迫的缓解作用相对较低或无明显缓解作用.以X369为例,与对照处理 (CK1) 相比,在100 μmol·L-1 Ni胁迫时,水稻幼芽总根长和根表面积分别降低了58.4%和55.0%,当添加5 μmol·L-1和10 μmol·L-1褪黑素浓度时,相较于无Ni胁迫的对照处理,水稻幼芽总根长仅降低了33.2%和8.7%,根表面积分别下降了23.3%和9.7%;1、50和100 μmol·L-1褪黑素添加时,对Ni胁迫的缓解作用相对较低或无明显缓解作用,并没有表现出显著差异.不同浓度褪黑素对Ni胁迫下X83根系生长的影响与X369接近,均在5 μmol·L-1和10 μmol·L-1时有明显的缓解作用,其中10 μmol·L-1对两个水稻品种影响均最为显著.与无Ni胁迫的处理相比,在添加10 μmol·L-1褪黑素处理后,水稻总根长仅降低了8.7%~29.1%,显著低于仅有Ni胁迫的58.4%~83.8%.因此选择该浓度作为下一阶段MT添加浓度.

表 2 褪黑素对Ni胁迫下 (100 μmol·L-1) 水稻幼芽根系形态相关参数的影响1) Table 2 Effects of exogenous melatonin on rice root parameters under Ni stress

2.3 褪黑素添加对Ni胁迫下水稻幼芽生长的影响

图 1表示10 μmol·L-1褪黑素添加对Ni胁迫下水稻幼芽地上部和根部生长的影响,从中可以看出Ni胁迫可明显抑制水稻根芽的生长.在无Ni胁迫的情况下添加褪黑素对水稻芽生长无明显影响,对根长影响也不显著,但明显提高了根鲜重.当水稻受到Ni胁迫时,添加外源褪黑素对水稻幼芽生长抑制有明显的缓解作用,其中水稻幼芽根系生长的影响较地上部生长的影响更为明显.以X369为例,在仅添加褪黑素时,水稻芽长、根长和芽重与对照处理 (CK) 相比均无显著性差异 (P>0.05),根重与对照处理相比呈显著差异 (P < 0.05),提高10.8%.在仅有100 μmol·L-1Ni胁迫时,相较于对照处理,水稻芽长和根长分别下降20.2%和84.7%,芽重和根重分别下降26.3%和89.6%,但是当添加10 μmol·L-1外源褪黑素后,Ni对水稻芽和根生长的抑制作用有明显的降低 (P < 0.05),与对照处理相比,添加褪黑素后水稻芽长和根长分别仅下降了11.6%和41.3%,芽重和根重分别下降2.0%和16.6%.

CK:0 μmol·L-1 Ni+0 μmol·L-1 MT;MT:0 μmol·L-1 Ni+10 μmol·L-1 MT;Ni:100 μmol·L-1Ni+0 μmol·L-1 MT;Ni+MT:100 μmol·L-1 Ni+10 μmol·L-1 MT;不同小写字母表示不同处理间差异显著 (P < 0.05),下同 图 1 外源褪黑素对Ni胁迫下水稻根长、芽长、根重和芽重的影响 Fig. 1 Effects of exogenous melatonin on fresh weight and length of rice seedings

2.4 褪黑素添加对水稻幼芽氧化胁迫及蛋白含量的影响

图 2表示褪黑素添加对水稻幼芽相对电导率的影响,从中看出褪黑素添加可显著降低Ni胁迫下水稻幼芽的电导率 (P < 0.05).以X369为例,与对照处理相比,在无Ni胁迫的情况下,仅添加褪黑素对水稻幼芽相对电导率无明显影响,而Ni胁迫处理明显提高水稻幼芽的相对电导率,达到26.7%;添加褪黑素能明显降低Ni胁迫导致的水稻幼芽电导率的增加.同样,X83品种也看出相同的趋势.与100 μmol·L-1 Ni胁迫处理相比,添加10 μmol·L-1褪黑素能显著地降低两种水稻品种相对电导率25.7%~31.6%.

图 2 褪黑素对Ni胁迫下水稻幼芽相对电导率的影响 Fig. 2 Effects of melatonin on relative electrolytic leakage in rice seedings under Ni stress

褪黑素添加对水稻幼芽CAT活性的影响如图 3所示,褪黑素添加能明显提高Ni胁迫下水稻幼芽的CAT活性 (P < 0.05).以X369为例,与对照处理相比,除了单独添加褪黑素处理对水稻幼芽CAT活性无明显影响外,100 μmol·L-1 Ni和100 μmol·L-1 Ni+10 μmol·L-1 MT处理分别导致水稻幼芽CAT活性提高25.2%和52.5%.水稻品种X83也表现出相似的规律.与100 μmol·L-1 Ni胁迫处理相比,添加10 μmol·L-1褪黑素能显著地提高两种水稻品种CAT活性21.9%~33.7%.

图 3 褪黑素对Ni胁迫下水稻幼芽CAT活性的影响 Fig. 3 Effects of melatonin on CAT activity in rice seedings under Ni stress

添加外源褪黑素对水稻幼芽O2产生速率的影响如图 4所示,褪黑素的添加能明显降低Ni胁迫下水稻幼芽O2产生速率 (P < 0.05).以X369为例,在无Ni胁迫时,褪黑素添加对O2产生速率无明显影响.单独Ni胁迫时,水稻体内O2产生速率比对照组提高130.8%,而100 μmol·L-1 Ni+10 μmol·L-1 MT处理仅比对照组提高53.7%. X83品种也看出相同的趋势.与100 μmol·L-1 Ni胁迫处理相比,添加10 μmol·L-1褪黑素能显著地降低两种水稻品种O2产生速率43.2%~50.2%.

图 4 褪黑素对Ni胁迫下水稻幼芽O2产生速率的影响 Fig. 4 Effects of melatonin on O2 production rate in rice seedings under Ni stress

图 5表示添加外源褪黑素对水稻幼芽可溶性蛋白含量的影响.褪黑素的添加能明显提高Ni胁迫下水稻幼芽的可溶性蛋白含量.以X369为例,单独Ni胁迫时水稻体内可溶性蛋白含量比对照组降低46.9% (P < 0.05),与单独Ni胁迫处理相比,100 μmol·L-1 Ni+10 μmol·L-1 MT处理显著提高水稻幼芽体内的可溶性蛋白含量.与100 μmol·L-1 Ni胁迫处理相比,添加10 μmol·L-1褪黑素能显著提高两种水稻品种可溶性蛋白含量82.6%~84.6%.

图 5 褪黑素对Ni胁迫下水稻可溶性蛋白含量的影响 Fig. 5 Effects of melatonin on soluble protein content in rice seedings under Ni stress

3 讨论

自1958年Lerner等[19]首次从牛的松果体分离出褪黑素后,在很长一段时间内,人们认为褪黑素是仅存在于动物的一类神经激素[8],直至近年,其对植物体逆境胁迫方面的作用才逐渐受到重视.本实验研究表明褪黑素添加对水稻Ni胁迫有一定的缓解作用,特别是在缓解Ni胁迫导致的水稻根系生长抑制上效果显著.

本研究结果显示水稻根系生长在低浓度Ni胁迫下有一定的促进作用,但是当Ni浓度提高时,水稻根系生长表现出明显的抑制作用,这一抑制作用在地上部表现得并没有根部明显,这与前人的研究结果相似,即Ni对植物体的胁迫作用在其达到较高浓度时才会表现出来,同时这种胁迫作用首先表现在根部,其次才是地上部[20].褪黑素添加能明显促进水稻幼芽根系生物量的积累,这可能是由于褪黑素能促进水稻根系的新陈代谢过程,加快水稻根系发育,而褪黑素对水稻地上部的影响没有那么明显,这与笔者最近的研究结果相类似[17].

褪黑素对植物体的作用具有较强的浓度依赖性,对于同一品种植物体,不同浓度褪黑素对植物体所受胁迫作用可能是缓解,也可能是加剧相关胁迫作用. Posmyk等[21]研究了不同浓度褪黑素前处理对红叶卷心菜Cu胁迫下种子萌发的影响,发现经过1 μmol·L-1和10 μmol·L-1褪黑素处理后,对无Cu胁迫和有Cu胁迫处理种子的萌发均有促进作用,而100 μmol·L-1褪黑素处理却不利于种子的萌发. Tiryaki等[22]研究艾菊叶法色草种子经过褪黑素前期处理后,发芽率和发芽时间都有明显变化,当褪黑素浓度较高时,褪黑素的影响偏负面.本实验在研究不同MT浓度处理对水稻Ni胁迫的缓解情况时,发现5 μmol·L-1和10 μmol·L-1褪黑素对Ni胁迫下水稻幼芽根系生长的影响最为明显,水稻总根长、总表面积、总体积和分叉数等均比对照处理明显提高,根长、芽长、根重和芽重也比对照处理显著提高,而低浓度和高浓度褪黑素的缓解作用相对较低或无明显缓解作用. Weeda等[23]利用转录组分析发现拟南芥经过褪黑素处理16 h后,低浓度褪黑素处理时,有81个基因的转录水平发生明显变化,其中30个上调,51个下调;高浓度褪黑素处理时,1 308个基因发生明显变化,其中566个上调,742个下调,同时并不是所有被低浓度影响的基因都会被高浓度影响,这也侧面说明了不同浓度褪黑素在植物中的作用不尽相同.由此可见,在使用褪黑素进行植物逆境胁迫缓解研究时,提前筛选合适的处理浓度有着重要的作用.

植物体需要微量Ni维持正常的生命活动,但过量Ni胁迫将会导致植物体内活性氧大量产生和积累,膜脂过氧化加剧,质膜透性显著增大[24].在本实验未添加褪黑素的处理中,添加高浓度Ni (100 μmol·L-1) 胁迫明显提升水稻幼芽中O2产生速率,水稻体内CAT活性一定程度的提高并未能阻止活性氧在其体内的积累.活性氧积累加剧了水稻体内膜脂过氧化,使得细胞内可溶性物质外渗,最终表现为水稻幼芽体内相对电导率增加.同时,高浓度Ni胁迫也明显降低了水稻幼芽中可溶性蛋白含量,这可能是由于高浓度Ni胁迫直接或间接影响了植物体内蛋白质的合成以及蛋白酶的活性.本研究实验结果表明,高浓度Ni胁迫下,10 μmol·L-1褪黑素的添加显著地提高了水稻幼芽CAT活性,降低了O2产生速率,从而有效地缓解了水稻幼芽的膜脂过氧化,并表现为水稻幼芽体内相对电导率的下降.同时,适宜浓度褪黑素添加显著提高Ni胁迫下水稻幼芽的可溶性蛋白含量,这与Hasan等[25]在研究褪黑素缓解西红柿Cd胁迫所得的结果相吻合,该研究发现褪黑素处理的西红柿体内不仅谷胱甘肽含量明显增加,植物螯合肽等含量也较之对照组有明显升高.

4 结论

(1) 高浓度Ni胁迫对水稻幼芽生长有明显的抑制作用,适宜浓度外源褪黑素的添加对Ni胁迫下水稻幼芽生长有明显的促进作用,但是外源褪黑素浓度过高时则未表现出明显的促进作用.

(2) 添加外源褪黑素显著提高Ni胁迫下水稻幼芽抗氧化酶CAT的活性,降低O2产生速率,进而降低了Ni胁迫下水稻幼芽的相对电导率,说明添加外源褪黑素能有效缓解Ni胁迫导致的水稻幼芽膜脂过氧化.

参考文献
[1] 黄益宗, 郝晓伟, 雷鸣, 等. 重金属污染土壤修复技术及其修复实践[J]. 农业环境科学学报, 2013, 32(3): 409–417. Huang Y Z, Hao X W, Lei M, et al. The remediation technology and remediation practice of heavy metals-contaminated soil[J]. Journal of Agro-Environment Science, 2013, 32(3): 409–417.
[2] 刘春早, 黄益宗, 雷鸣, 等. 湘江流域土壤重金属污染及其生态环境风险评价[J]. 环境科学, 2012, 33(1): 260–265. Liu C Z, Huang Y Z, Lei M, et al. Soil contamination and assessment of heavy metals of Xiangjiang river basin[J]. Environmental Science, 2012, 33(1): 260–265.
[3] 张连科, 李海鹏, 黄学敏, 等. 包头某铝厂周边土壤重金属的空间分布及来源解析[J]. 环境科学, 2016, 37(3): 1139–1146. Zhang L K, Li H P, Huang X M, et al. Soil heavy metal spatial distribution and source analysis around an aluminum plant in Baotou[J]. Environmental Science, 2016, 37(3): 1139–1146.
[4] 黄锦孙, 韦东普, 郭雪雁, 等. 田间土壤外源铜镍在小麦中的累积及其毒害研究[J]. 环境科学, 2012, 33(4): 1369–1375. Huang J S, Wei D P, Guo X Y, et al. Toxicity and accumulation of copper and nickel in wheat plants cropped on alkaline and acidic field soils[J]. Environmental Science, 2012, 33(4): 1369–1375.
[5] 环境保护部, 国土资源部.全国土壤污染状况调查公报[EB/OL]. http://www.zhb.gov.cn/gkml/hbb/qt/201404/t20140417_270670.htm, 2014-04-17. Ministry of Enviormental Protection, Minnistry of Land and Resources. National survey of soil pollution[EB/OL]. http://www.zhb.gov.cn/gkml/hbb/qt/201404/t20140417_270670.htm, 2014-04-17.
[6] 胡欣欣.土壤钴、镍向植物的转移及毒害效应研究[D].福州:福建农林大学, 2010. Hu X X. Study on the transfer characteristics of cobalt and nickel from soils to plants and their toxicity to plants[D]. Fuzhou:Fujian Agriculture and Forestry University, 2010.
[7] 马贵. 镍胁迫对玉米萌发和早期生长的影响[J]. 安徽农业科学, 2010, 38(32): 18029–18030, 18034. Ma G. Effect of nickel stress on germination and seedling growth of maize[J]. Journal of Anhui Agricultural Sciences, 2010, 38(32): 18029–18030, 18034.
[8] Tan D X, Hardeland R, Manchester L C, et al. The changing biological roles of melatonin during evolution:from an antioxidant to signals of darkness, sexual selection and fitness[J]. Biological Reviews, 2010, 85(3): 607–623.
[9] Zhang N, Sun Q Q, Zhang H J, et al. Roles of melatonin in abiotic stress resistance in plants[J]. Journal of Experimental Botany, 2015, 66(3): 647–656. DOI: 10.1093/jxb/eru336
[10] Zhang N, Zhao B, Zhang H J, et al. Melatonin promotes water-stress tolerance, lateral root formation, and seed germination in cucumber (Cucumis sativus L.)[J]. Journal of Pineal Research, 2013, 54(1): 15–23. DOI: 10.1111/j.1600-079X.2012.01015.x
[11] Turk H, Erdal S. Melatonin alleviates cold-induced oxidative damage in maize seedlings by up-regulating mineral elements and enhancing antioxidant activity[J]. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, 2015, 178(3): 433–439. DOI: 10.1002/jpln.v178.3
[12] 王丽英.褪黑素预处理对黄瓜幼苗耐盐性的影响[D].杨凌:西北农林科技大学, 2014. Wang L Y. Effects of melatonin pretreatment on salt tolerances of cucumber seedlings[D]. Yangling:Northwest A & F University, 2014.
[13] 王英利, 王英娟, 郝建国, 等. 褪黑素对绿豆在增强UV-B辐射下的防护作用[J]. 光子学报, 2009, 38(10): 2629–2633. Wang Y L, Wang Y J, Hao J G, et al. Defend effects of melatonin on mung bean under UV-B irridiation[J]. Acta Photonica Sinica, 2009, 38(10): 2629–2633.
[14] 孙莎莎, 巩彪, 温丹, 等. 对羟基苯甲酸胁迫下褪黑素对黄瓜胚根生理生化特性的影响[J]. 应用生态学报, 2016, 27(3): 897–903. Sun S S, Gong B, Wen D, et al. Effect of exogenous melatonin on physiological and biochemical characteristics of cucumber radicles under p-hydroxybenzoic acid[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2016, 27(3): 897–903.
[15] 包宇, 罗庆熙, 黄娟, 等. 外源褪黑素对低温胁迫下番茄幼苗生理指标的影响[J]. 西南师范大学学报 (自然科学版), 2013, 38(10): 57–61. Bao Y, Luo Q X, Huang J, et al. Effect of exogenous melatonin on physiological indexes of tomato seedling under low temperature stress[J]. Journal of Southwest China Normal University (Natural Science Edition), 2013, 38(10): 57–61.
[16] Tal O, Haim A, Harel O, et al. Melatonin as an antioxidant and its semi-lunar rhythm in green macroalga Ulva sp[J]. Journal of Experimental Botany, 2011, 62(6): 1903–1910. DOI: 10.1093/jxb/erq378
[17] 刘仕翔, 黄益宗, 罗泽娇, 等. 外源褪黑素处理对镉胁迫下水稻种子萌发的影响[J]. 农业环境科学学报, 2016, 35(6): 1034–1041. Liu S X, Huang Y Z, Luo Z J, et al. Effects of exogenous melatonin on germination of rice seeds under Cd stresses[J]. Journal of Agro-Environment Science, 2016, 35(6): 1034–1041.
[18] 王学奎. 植物生理生化实验原理和技术[M]. 北京: 高等教育出版社, 2006.
[19] Lerner A B, Case J D, Takahashi Y. Isolation of melatonin, the pineal gland factor that lightens melanocytes[J]. Journal of the American Chemical Society, 1958, 80(10): 2587.
[20] 康立娟, 谢忠雷. 镍对玉米和水稻污染效应及累积规律的研究[J]. 农业环境科学学报, 2008, 27(6): 2315–2318. Kang L J, Xie Z L. Pollution effects and accumulation rules of nickel in corn and rice[J]. Journal of Agro-Environment Science, 2008, 27(6): 2315–2318.
[21] Posmyk M M, Kuran H, Marciniak K, et al. Presowing seed treatment with melatonin protects red cabbage seedlings against toxic copper ion concentrations[J]. Journal of Pineal Research, 2008, 45(1): 24–31. DOI: 10.1111/jpi.2008.45.issue-1
[22] Tiryaki I, Keles H. Reversal of the inhibitory effect of light and high temperature on germination of Phacelia tanacetifolia seeds by melatonin[J]. Journal of Pineal Research, 2012, 52(3): 332–339. DOI: 10.1111/jpi.2012.52.issue-3
[23] Weeda S, Zhang N, Zhao X L, et al. Arabidopsis transcriptome analysis reveals key roles of melatonin in plant defense systems[J]. PLoS One, 2014, 9(3): e93462. DOI: 10.1371/journal.pone.0093462
[24] 胡泽友, 邓小波, 彭喜旭, 等. 外源钙对镍胁迫下水稻幼苗抗氧化酶活性及膜脂过氧化的影响[J]. 中国水稻科学, 2007, 21(4): 367–371. Hu Z Y, Deng X B, Peng X X, et al. Effects of external calcium on activities of antioxidant enzymes and membrane lipid peroxidation in rice seedlings under nickel stress[J]. Chinese Journal of Rice Science, 2007, 21(4): 367–371.
[25] Hasan M K, Ahammed G J, Yin L L, et al. Melatonin mitigates cadmium phytotoxicity through modulation of phytochelatins biosynthesis, vacuolar sequestration, and antioxidant potential in Solanum lycopersicum L[J]. Frontiers in Plant Science, 2015, 6: 601.