环境科学  2015, Vol. 36 Issue (5): 1674-1677   PDF    
化学消毒的中和剂对水中内毒素活性检测的影响
张灿1,2, 刘文君2 , 史云1, 安代志1, 白淼1, 徐稳1    
1. 军事医学科学院疾病预防控制所, 北京 100071;
2. 清华大学环境学院, 北京 100084
摘要:本研究选取化学消毒的常用6种中和剂组氨酸、甘氨酸、抗坏血酸、吐温80、亚硫酸钠和硫代硫酸钠,采用动态浊度鲎试验定量检测样品中内毒素活性,研究中和剂在不同浓度范围内单独使用对内毒素活性检测的影响,旨在优选出适于鲎法检测细菌内毒素的中和剂种类,确定合适的浓度范围. 结果表明在0~1.0%浓度范围内,除了甘氨酸和硫代硫酸钠之外,组氨酸、抗坏血酸、吐温80、亚硫酸钠(碱性和中性)均对鲎试验结果有不同程度的干扰,都不能在鲎试验之前作为化学消毒的中和剂. 虽然0~1.0%浓度的甘氨酸对鲎试验结果基本无明显影响,但是甘氨酸和戊二醛的中和产物显黄色,所以不适于在光度法鲎试验中用作戊二醛的中和剂. 0~1.0%浓度的硫代硫酸钠对鲎试验结果基本无明显干扰,但是当浓度升高至1.0%~5.0%时会对鲎试验结果有一定的抑制作用. 与组氨酸、甘氨酸、抗坏血酸、吐温80和亚硫酸钠相比,硫代硫酸钠更适于在内毒素活性检测之前用作消毒剂的中和剂,但是浓度应控制在0.5%范围以内.
关键词中和剂     细菌内毒素     化学消毒     鲎试验     干扰    
Interference for Various Quench Agents of Chemical Disinfectants on Detection of Endotoxin Activities in Water
ZHANG Can1,2, LIU Wen-jun2 , SHI Yun1, AN Dai-zhi1, BAI Miao1, XU Wen1    
1. Institute of Disease Control and Prevention, Academy of Military Medical Sciences, Beijing 100071, China;
2. School of Environment, Tsinghua University, Beijing 100084, China
Abstract: The quenching agents such as histidine, glycine, ascorbic acid, Tween-80, sodium sulfite and sodium hyposulfite are commonly used for quenching the residual disinfectant in water. In this paper, in order to select the optimal type and concentration range of quenching agents prior to the Limulus assays, the interference effects of each quenching agent at different concentrations on endotoxin detection were investigated by the Limulus assays of kinetic-turbidity. Our results identified that, as for 0-1.0% concentration of histidine, ascorbic acid, Tween-80, sodium sulfite (pH unadjusted and pH neutral), interference on the Limulus assays was existed. Hence, these quenching agents could not be applied as neutralizers prior to Limulus assays. Although, there was no interference on endotoxin detection for the glycine, a yellow color, developed by the quenching products of glycine and glutaric dialdehyde, contributed to false positive results. Hence, glycine should not be used as quenching agents in Limulus assays for samples containing glutaric dialdehyde. Compared with other quenching agents as histidine, glycine, ascorbic acid, Tween-80, sodium sulfite, 0-1.0% concentration of sodium hyposulfite elicited no obvious interference, while 1.0%-5.0% concentration of sodium hyposulfite illustrated exhibition effect for endotoxin detection. All in all, compared with other quenching agents as histidine, glycine, ascorbic acid, Tween-80 and sodium sulfite, sodium hyposulfite is suitable for quenching chemicals prior to endotoxin detection and less than 0.5% of concentration is allowable.
Key words: quenching agent     bacterial endotoxin     disinfection     Limulus assay     interference    

细菌内毒素又称脂多糖,是革兰氏阴性细菌和某些蓝藻的细胞壁组分物质,活菌释放较少,主要由菌体解体后释放[1]. 内毒素是常见的外源性致热原,属于强免疫刺激因子,具有广泛的生物活性,与多种人类疾病密切相关. 机体对内毒素反应极为敏感,Elin等[2]报道使用0.1~0.5 ng ·kg-1内毒素进行体内注射可以引起人体的发热反应. 血液暴露是内毒素的主要暴露途径. 为了保证与血液接触的药品、 医疗器械及医疗用水的安全性,内毒素检查一直被认为是医药行业的重要检验项目. 目前内毒素的法定检测方法是鲎试验,其机制是鲎血中阿米巴细胞与内毒素发生一系列酶促反应导致凝集反应[3]. 光度法鲎试验(浊度法和显色法)是内毒素的定量测试方法,2005年中国药典正式将光度法收录[4]. 鲎试验属于生物毒性测试,不是精确的分析方法,干扰因素很多. 药典规定鲎试验中常用的干扰去除方法是对样品多倍稀释,并控制加标回收率在50%~200%之内[4]. 但是,对于严重干扰的样品经多倍稀释后内毒素活性降低,有时不能达到鲎试剂的最低检测限,难以保证合适的回收率. 因此,在鲎试验前不仅需要确定样品含有的干扰因素,还需要避免添加严重干扰鲎试验的物质. 另外,在采用光度法鲎试验时,还应避免添加影响光密度值的物质.

近年来细菌内毒素的研究领域从医药行业逐渐外展,水体环境内毒素所致潜在的健康风险已经引起越来越多关注. 当水中微生物增殖或者蓝藻暴发,菌体死亡或者经过消毒处理后释放的大量内毒素,可以通过呼吸和胃肠暴露等途径危害机体健康. 在水消毒工艺方面,不同的消毒工艺、 消毒剂量和反应时间都会对内毒素的释放和控制效果带来影响. 在评价化学消毒措施对内毒素释放的控制效果时,必须先采用中和剂来去除样品中残留消毒剂,因此应该避免化学消毒的中和剂对鲎试验结果的干扰. 目前环境领域和医疗领域常见化学消毒的中和剂有多种,如组氨酸、 甘氨酸、 抗坏血酸、 吐温80、 亚硫酸钠和硫代硫酸钠等. 这些中和剂对所试微生物无抑制或杀灭作用,对培养基的营养成分无破坏作用,但是对鲎试验检测结果的干扰情况尚不清晰. 本研究采用动态浊度鲎试验,探讨常见的中和剂单独使用时对内毒素活性定量检测结果的干扰情况,旨在选择适用于内毒素检测的中和剂,并确定合适的使用浓度范围.

1 材料与方法 1.1 玻璃器皿

无热原稀释试管(15 mm×100 mm)、 无热原反应试管(8 mm×75 mm)和无热原移液器吸头购买自湛江安度斯生物公司. 其他玻璃器皿经铬酸浸泡24 h,热自来水冲洗,超纯水冲洗,马弗炉干烘350~400℃ 2 h去除热原. 1.2 仪器与试剂

内毒素定量检测采用ATI320-06动态试管仪及配套软件(Lab Kinetic公司,英国). pH值测定采用Pb-21酸度计(Sartorius公司,德国). Mill-Q纯水机(Millipore公司,美国). 另外,还需要涡旋混合器、 马弗炉、 移液器. 动态浊度法鲎试剂(最低检测限0.03 EU ·mL-1)、 无热原检查用水(<0.003 EU ·mL-1)和无热原Tris-HCl(pH 7.4)缓冲溶液购买自湛江安度斯生物公司. 内毒素工作标准品(control standard endotoxin,CSE,批号150601,每支90 EU)购买自中国药品生物制品检定所(北京). 生物化学试剂如抗坏血酸、 Na2SO3和Na2S2O3为分析纯,组氨酸、 甘氨酸和吐温80购买自Sigma公司. 1.3 动态浊度法鲎试验检测内毒素活性

采用动态浊度鲎试验定量检测内毒素活性,将0.1 mL鲎试剂加入反应管,加入0.1 mL样品混合均匀,立即放入ATI320-06动态试管仪进行检测. 样品和鲎试剂在37℃温育条件下发生凝集反应,ATI320-06动态试管仪及软件生成每个样品的反应动态曲线,记录反应试管在波长405 nm处达到95%透光率的达限时间. 样品的达限时间和所含内毒素活性负相关,根据标准曲线来确定样品内毒素活性. 每个样品采用2个平行样,并以0.1 EU ·mL-1CSE溶液作为阳性对照,记录回收率、 稀释倍数、 达限时间等其他参数. 样品测试3次取均值. 试验结果应满足以下条件: ① 标准曲线中阴性对照的达限时间长于最低活性 (0.031 25 EU ·mL-1)的达限时间. ② 标准曲线相关系数R大于0.98. ③ 平行样的变异系数不得大于10%. ④ 根据药典规定,加标回收率在50%~200%之间认为稀释倍数合适,没有明显的干扰[4]. 1.4 内毒素检测的干扰试验

(1) CSE溶液的配制 打开CSE(每支90EU),向安瓿瓶内加1 mL无热原检查用水配制成90 EU ·mL-1的CSE溶液,密封后采用涡旋混合15 min. 将CSE溶液转移至无热原玻璃容器,加无热原检查用水稀释成0~2 EU ·mL-1的CSE溶液.

(2) 0~1.0%浓度的中和剂对鲎试验的影响 采用无热原检查用水,将组氨酸、 甘氨酸、 抗坏血酸、 吐温80、 亚硫酸钠(碱性)和硫代硫酸钠配制成浓度0、 0.5%、 1.0%、 2.0%、 5.0%和10.0%的中和剂溶液. 此外,采用无热原Tris-HCl(pH 7.4)缓冲溶液配制浓度分别为0、 0.5%、 1.0%、 2.0%、 5.0%和10.0%的亚硫酸钠(中性)溶液. 将已配制的不同浓度中和剂溶液按1 ∶9的比例添加至0~2 EU ·mL-1的CSE溶液中,检测组氨酸、 甘氨酸、 抗坏血酸、 吐温80、 亚硫酸钠(碱性)、 亚硫酸钠(中性)和硫代硫酸钠浓度分别在0、 0.05%、 0.1%、 0.2%、 0.5%和1.0%情况下内毒素活性的变化.

(3) 0~5.0%浓度的硫代硫酸钠对鲎试验的影响 将硫代硫酸钠加无热原检查用水溶解,配制成 0、 2.5%、 5.0%、 10.0%、 15.0%、 20.0%和 25.0%的硫代硫酸钠溶液. 将已配制的硫代硫酸钠溶液按 1 ∶4的比例添加至 0~2 EU ·mL-1的 CSE 溶液中,检测硫代硫酸钠浓度分别在 0、 0.5%、 1.0%、 2.0%、 3.0%、 4.0%和 5.0%情况下内毒素活性的变化.

2 结果与分析 2.1 常用的有机类中和剂对鲎试验结果的影响

组氨酸、 甘氨酸、 抗坏血酸和吐温80是常用的有机类中和剂,在0~1.0%的浓度范围对动态浊度法鲎试验的干扰结果如图 1所示. 结果表明,甘氨酸对内毒素活性的检测未见明显干扰,组氨酸、 抗坏血酸和吐温80对检测结果均有不同程度的影响,干扰程度详见表 1. 其中,0~1.0%浓度的组氨酸对内毒素活性的定量检测引起强烈的增强效果; 抗坏血酸引起显著的抑制效果; 吐温80引起明显的抑制作用. 甘氨酸和组氨酸等氨基酸类用来中和醛类消毒剂. 由于组氨酸是类内毒素物质,可以引起内毒素的聚集和吸附[5],严重影响光度法鲎试验的光度值,导致检测结果的增强. 当组氨酸浓度从0提高至0.05%时,检测结果从初始内毒素活性0.38 EU ·mL-1增高至0.95 EU ·mL-1,增强率达到 150%; 当组氨酸浓度从0.05%提高至0.5%时,内毒素活性提高至3.30 EU ·mL-1,增强率达到 768%. 0~1.0%浓度的甘氨酸对鲎试验结果基本无明显干扰. 检测结果表明当甘氨酸浓度从0提高至1.0%时,初始内毒素活性1.22 EU ·mL-1增高至1.39 EU ·mL-1,增强率仅为14%. 但是,甘氨酸和戊二醛的中和产物显黄色,会对光度法鲎试验(浊度法和显色法)产生严重干扰,因此在光度法鲎试验中,甘氨酸不适于做戊二醛的中和剂使用. 吐温80是常用的中和剂,可以和卵磷脂配伍用于清除吸附力较强的离子型消毒剂如季铵盐类和酚类[6]. 0~1.0%浓度的吐温80对内毒素检测引起明显的抑制效果. 当吐温80浓度从0提高至1.0%时,检测结果从初始内毒素活性1.18 EU ·mL-1降低至0.69 EU ·mL-1,抑制率为41%. 抗坏血酸是常用的抗氧化剂,可以用作卤素消毒的中和剂. 0~1.0%浓度的抗坏血酸对鲎试验结果引起显著的抑制效果. 当抗坏血酸浓度从0%提高至0.05%,检测结果从初始内毒素活性1.23 EU ·mL-1降低至0.70 EU ·mL-1,抑制率达到43%; 当抗坏血酸浓度提高至1.0%时,内毒素活性降低至0.34 EU ·mL-1,抑制率达到72%. 抗坏血酸的酸性强,向样品中添加会导致内毒素的酸解或者对鲎试剂酶活性造成破坏,抑制鲎试验的反应并影响检测结果.

图 1 有机类中和剂(0~1.0%浓度)对动态浊度法鲎试验的影响Fig. 1 Interference of organic quenchers(0-1.0%)on Limulus assay
2.2 常用无机类中和剂对鲎试验结果的影响

亚硫酸钠和硫代硫酸钠是常用的无机类中和剂,其在0~1.0%的浓度范围对动态浊度法鲎试验的干扰结果如图 2所示,干扰程度见表 1. 亚硫酸钠是卤素和醛类消毒剂的中和剂,由于亚硫酸钠的碱性强,使用时分为碱性和中性两种情况. 0~1.0%浓度的亚硫酸钠(碱性)对内毒素检测有明显的增强效果. 当亚硫酸钠(碱性)浓度从0提高至1.0%时,检测结果从初始内毒素活性1.08 EU ·mL-1增高至1.50 EU ·mL-1,增强率为39%. 亚硫酸钠(碱性)对鲎试验有增强效果,这是因为鲎试剂中含有一定数量的Ca2+和Mg2+用来保持试剂的分散性,OH-的增多会影响Ca2+和Mg2+的状态,导致鲎试剂分散性差,引起反应产物聚集导致增强结果[7]. 0~1.0%浓度的亚硫酸钠(中性)对内毒素检测引起显著的抑制作用. 亚硫酸钠(中性)浓度从0提高至1.0%时,检测结果从初始内毒素活性1.08 EU ·mL-1降低至0.38 EU ·mL-1,抑制率为65%. 虽然亚硫酸钠在调节pH值至中性后,可以消除水样的碱度带来的干扰,但是添加的H+和 SO2-3生成的HSO-3破坏鲎试剂中酶的活性,对鲎试验有抑制效果. 硫代硫酸钠是卤素类消毒剂、 汞制剂及过氧乙酸等的中和剂[6]. 0~1.0%浓度的硫代硫酸钠对鲎试验结果基本无明显干扰,当硫代硫酸钠浓度从0提高至1.0%时,内毒素活性从初始值1.08 EU ·mL-1降低为1.01 EU ·mL-1,抑制率仅为6.5%. 但是当硫代硫酸钠浓度提高至1.0%~5.0%时,对内毒素检测结果有明显的抑制效果(图 3). 因此,低浓度的硫代硫酸钠溶液适于在鲎试验之前作为消毒剂的中和剂,但是浓度应该控制在0.5%以内.

图 2 无机类中和剂(0~1.0%浓度)对动态浊度法鲎试验的影响Fig. 2 Interference of inorganic quenchers (0-1.0%) on Limulus assay

表 1 中和剂对鲎试验的影响结果分析1)Table 1 Analysis of quenchers interference on Limulus assay

图 3 硫代硫酸钠(0~5.0%浓度)对动态浊度法鲎试验的影响Fig. 3 Interference of sodium hyposulfite (0-5.0%)on Limulus assay
3 结论

(1)在0~1.0%浓度范围内,除甘氨酸和硫代硫酸钠之外,组氨酸、 抗坏血酸、 吐温80和亚硫酸钠(中性和碱性)对内毒素检测结果均有不同程度的干扰.

(2)组氨酸对内毒素活性的定量检测有强烈的增强效果; 抗坏血酸引起显著的抑制效果; 吐温80引起明显的抑制效果; 亚硫酸钠(碱性)引起明显的增强效果; 亚硫酸钠(中性)有显著的抑制效果.

(3)此外,0~1.0%浓度的甘氨酸对内毒素检测基本无明显干扰,但是甘氨酸和戊二醛的中和产物呈黄色,当作为戊二醛的中和剂使用时会对光度法鲎试验的结果产生干扰. 0~1.0%浓度的硫代硫酸钠对鲎试验结果基本无明显干扰,但是高浓度的硫代硫酸钠(1.0%~5.0%)会对鲎试验引起明显的抑制效果.

(4)与组氨酸、 甘氨酸、 抗坏血酸、 吐温80和亚硫酸钠相比,硫代硫酸钠更适合在鲎试验之前用作中和剂,但是浓度应控制在0.5%范围以内. 此外,有些消毒措施不适合选择硫代硫酸钠作为中和剂,需进一步筛选出对鲎试验无明显干扰的其他中和剂,避免使用组氨酸、 抗坏血酸、 吐温80和亚硫酸钠这类对鲎试验有干扰的中和剂.

参考文献
[1] Anderson W B, Slawson R M, Mayfield C I. A review of drinking-water-associated endotoxin, including potential routes of human exposure[J]. Canadian Journal of Microbiology, 2002, 48 (7): 567-587.
[2] Elin R J, Wolff S M, McAdam K P W J, et al. Properties of reference Escherichia coli endotoxin and its phthalylated derivative in humans[J]. The Journal of Infectious Diseases, 1981, 144 (4): 329-336.
[3] Levin J, Bang F B. Clottable protein in Limulus; its localization and kinetics of its coagulation by endotoxin[J]. Thrombosis et Diathesis Haemorrhagica, 1968, 19 (1): 186-197.
[4] ZBBZH/ZY/2, 中华人民共和国药典 二部(2005年版)[S].
[5] Matsumae H, Minobe S, Kindan K, et al. Specific removal of endotoxin from protein solutions by immobilized histidine[J]. Biotechnology and Applied Biochemistry, 1990, 12 (2): 129-140.
[6] 高东旗. 合理使用中和剂评价化学消毒剂的杀菌作用[J]. 医学动物防制, 2002, 18 (1): 31-33.
[7] 张灿, 刘文君, 张明露, 等. 水体环境内毒素活性的鲎法定量检测及影响因素研究[J]. 环境科学, 2013, 34 (9): 3381-3385.