环境科学  2015, Vol. 36 Issue (3): 869-878   PDF    
两江交汇处水体溶解性有机质的吸收和荧光光谱特征:以渠江-嘉陵江、涪江-嘉陵江为例
闫金龙1, 江韬1,2 , 高洁1, 魏世强1, 卢松1, 刘江1    
1. 西南大学资源环境学院, 三峡库区生态环境教育部重点实验室, 重庆市农业资源与环境研究重点实验室, 重庆 400716;
2. Department of Forest Ecology and Management, Swedish University of Agricultural Sciences, Umeå SE-90183, Sweden
摘要:利用三维荧光和紫外-可见吸收光谱手段,分析了渠江、涪江和嘉陵江交汇处水体DOM特征变化. 结果表明,干支流各采样点水体DOM的FI值<1.4,HIX值>0.8,表现出明显陆源输入特征,整个研究区域水体混合模式为非保守混合,对交汇处水体DOM地化特征变化有一定贡献,但并非主导因素. 河流沿岸不同土地利用类型对交汇处水体DOM特征改变有明显影响,聚类分析发现,所有采样点可分为两大类,一类为沿岸以森林和农田生态系统为主(渠江-嘉陵江交汇处),另一类为沿岸以城市用地为主(涪江-嘉陵江交汇处),前者向干流水体中输入芳香化程度和腐殖化程度较高的DOM,后者以浓度较高而结构相对较简单的DOM输入为主. 此外,涪江-嘉陵江交汇处类蛋白质荧光组分信号增强,出现荧光T峰,表明人为活动对水体质量的影响明显.
关键词溶解性有机质     三维荧光光谱     紫外-可见吸收光谱     河流交汇     土地利用类型    
Characteristics of Absorption and Fluorescence Spectra of Dissolved Organic Matter from Confluence of Rivers: Case Study of Qujiang River-Jialing River and Fujiang River-Jialing River
YAN Jin-long1, JIANG Tao1,2 , GAO Jie1, WEI Shi-qiang1, LU Song1, LIU Jiang1    
1. Key Laboratory of Eco-environments in Three Gorges Reservoir Region, Ministry of Education, Chongqing Key Laboratory of Agricultural Resources and Environment, College of Resources and Environment, Southwest University, Chongqing 400716, China;
2. Department of Forest Ecology and Management, Swedish University of Agricultural Sciences, Umeå SE-90183, Sweden
Abstract: Three-dimensional fluorescence spectroscopy combined with ultraviolet-visible(UV-Vis) absorption spectra was used to investigate the change characteristics of dissolved organic matter(DOM) in confluences water of Qujiang River-Jialing River and Fujiang River-Jialing River, respectively. The results suggested that DOM showed a significant terrestrial input signal in all the sampling sites, FI<1.4, HIX>0.8, possibly representing remarkable signals of humus resulted from humic-like component. Moreover, the mixing zone of this study showed a non-conservative mixed behavior, which had a limited contribution, and was not the dominant factor to interpret the change characteristics of DOM in confluences zones. Different land-use types along all the rivers had an obvious impact on DOM inputs. Results of cluster analysis showed that a higher degree of aromaticity and humification components was observed as the predominant contributor to DOM when the land-use type was forest and farmland ecosystem, for example the confluences of Qujiang River-Jialing River. On the other hand, high concentrations of DOM with relative simple structures were found in the water when the urban land-use type was predominant, for example the confluences of Fujiang River-Jialing River. Meanwhile, a new fluorescent signal of protein-like components(peak T) appeared, which manifested a significant effect on the water quality resulted from anthropogenic activities.
Key words: dissolved organic matter     three-dimensional fluorescence spectroscopy     ultraviolet-visible absorption spectra     river confluences     land-use types    

溶解性有机质(dissolved organic matter,DOM)广泛存在于天然水体中,其成分包括蛋白质、 木质素、 碳水化合物、 小分子有机酸和一些结构未知的腐殖物质(富里酸和胡敏酸),且腐殖物质为DOM主要成分(50%~80%)[1]. 由于DOM中含有羧基、 酚基、 羟基和氨基等大量功能基团,对环境污染物的形态特征及迁移转化过程都会产生重要影响[2,3],同时作为重要的碳库,参与全球碳循环[4]. 因此,针对不同来源DOM地化特征的研究一直是热点. 作为重要的水环境,水体汇合处由于水流速度和水体滞留时间变化、 物理稀释等作用[5],进而影响水环境中DOM性质及其与其他污染物的环境行为. 目前,国内外针对水体汇合区域DOM地化特征已有相关研究[6, 7, 8, 9, 10],但多集中于河口或海湾等地,有关内陆淡水河流汇合处水体DOM性质的研究还不多见[11,12]. 此外,沿岸不同土地利用方式对河流水体DOM输入、 结构和化学组成均能产生重要影响[13, 14, 15],进而造成DOM地球化学特征的差异性,而国内有关沿岸不同土地利用方式对河流汇合处水体DOM性质的研究还鲜见报道. 因此,了解内陆河流DOM,尤其是水体汇合对DOM性质结构的影响,是进一步明确DOM在该类型水体系统中环境角色的重要前提,也是了解DOM在内陆河流中影响环境污染物迁移转化的基础.

另外,由于紫外-可见和三维荧光光谱具有灵敏度高、 样品用量少、 重复性高、 不破坏样品等优点,被广泛用于天然环境中DOM表征和分析,尤其是三维荧光光谱能有效反映DOM结构和来源等信息,为深入研究DOM地化特征提供了可能性[16]. 因此,本研究采用紫外-可见、 三维荧光光谱方法探讨了沿岸不同土地利用方式对河流交汇处水体DOM性质的影响,其结果对进一步揭示水体DOM在河流交汇处的地球化学行为提供科学基础. 1 材料与方法 1.1 样品采集

嘉陵江干流全长1 156 km,全流域集水面积约16万 km2,是长江上游重要支流. 涪江和渠江为嘉陵江两条支流,且均在重庆市合川区汇入嘉陵江. 渠江与嘉陵江汇合处距涪江与嘉陵江汇合处约8 km左右,前者位于郊区,沿岸以林地为主,后者位于城区码头处,文峰古街旁,受人为影响大. 具体沿岸土地利用类型见图 1.

图 1 采样点示意 Fig. 1 Sampling locations of water samples

于2013年6月采集干流嘉陵江表层(0~50 cm)水样,采样点分别为J-1(渠江汇入嘉陵江前),J-2(渠江与嘉陵江汇合处),J-3(渠江汇入嘉陵江后),J-4(涪江汇入嘉陵江前),J-5(涪江与嘉陵江汇合处),J-6(涪江汇入嘉陵江后). 同时采集了汇入嘉陵江前的渠江和涪江表层(0~50 cm)水样,分别为Q和F. 每个点位均采集3个水样. 现场测定水样pH,电导率(EC)和总溶解性固体(TDS). 水样放入4℃冷藏箱内,当天送回实验室. 采用0.45 μm水系混合纤维滤膜对水样进行过滤. DOM浓度采用GE InnovOx Laboratory TOC分析仪测定,以溶解性有机碳(DOC)表示,单位 mg ·L-1. 叶绿素a(Chl-a)采用丙酮萃取法测定[17]. 表 1为水样基本性质.

表 1 水体基本性质 Table 1 Basic parameters of water samples
1.2 吸收及荧光光谱扫描

DOM紫外-可见吸收光谱和三维荧光光谱均采用Horiba公司Aqualog荧光光谱仪测定(可同时测定吸收和荧光光谱). 紫外可见光谱扫描波长范围为: 230~800 nm; 间隔1 nm. 荧光光谱激发波长(Ex): 230~450 nm,发射波长(Em): 213~620 nm; 激发光源为150 W氙弧灯; 相应时间:3 s; 扫描间隔:Ex=5 nm,Em=3.18 nm; 两种光谱扫描均以Millipore超纯水(18.2 MΩ ·cm)作空白. Aqualog系统对荧光光谱自动校正瑞利和拉曼散射. 1.3 光谱特征值E

SUVA(λ)代表DOM在特定波长处的紫外特征值[18,19],SUVA(λ)=a(λ)/c,吸收系数a(λ)=2.303A(λ)/b,式中,λ是波长(nm),b代表比色皿的光程(m),A(λ)代表DOM在特定波长处的吸光度,c代表DOM浓度(mg ·L-1); E2/E3=a250/a365,a250、 a365分别代表DOM在250、 365 nm处的吸光系数(m-1)[20]. E3/E4=a300/a400,a300、 a400分别代表DOM在300、 400 nm处的吸光系数(m-1)[21]. Fn(355)为Ex=355 nm时,Em在440~470 nm间最大荧光强度,代表荧光物质浓度[22]. 荧光指数(FI)[23]:当Ex=370 nm时,Em为470 nm与520 nm处的荧光强度比值; 自身源指数(BIX)[24]:当Ex=310 nm时,Em为380 nm与430 nm处的荧光强度比值; 腐殖化指数(HIX)为积分比值[25,26]:当Ex=254 nm时,( Em=435~480 nm /[(∫Em=300~345 nm)+(∫Em=435~480 nm )]; r(A/C)为荧光A峰强度与荧光C峰强度的比值[27]. 1.4 数据分析

未做特别说明,本研究荧光峰定位采用Orgin 8.5 Peak Pick寻峰功能找峰. 荧光图谱采用Origin 8.5处理,相关数据处理及统计分析采用SPSS 17.0和Excel 2013进行. 2 结果与讨论 2.1 干流水体DOM浓度

干流嘉陵江水体DOM浓度变化如图 2. 除J-5外,干流水体DOC浓度沿水流方向逐渐增加[图 2(a)],这可能与沿岸DOM输入有关. CDOM是DOM中具有特定光学性质的部分,能有效吸收紫外线,保护水生生物免受紫外线的辐射[28],同时也是水体光学的重要指标,以a(355)表征[29]. 渠江与干流交汇处水体CDOM浓度高于交汇前后干流值,而涪江汇入干流前后,干流水体CDOM浓度随着干流方向逐渐减小. FDOM为DOM中具有荧光特性的组分,Fn(355)代表荧光物质相对浓度[22]. 由图 2(b),干流水体中荧光组分相对浓度沿水流方向逐渐增加,其中在涪江汇入嘉陵江前后,干流水体荧光组分相对浓度增幅较大. 整体而言,从J-1~J-6,DOM中各浓度指标呈增加趋势,尽管光漂白和生物降解可能导致DOM损耗[30,31],但仍主要以DOM输入为主.

图 2 干流水体DOM、 CDOM、 FDOM浓度 Fig. 2 Changes of DOC,CDOM and FDOM concentrations in the main stream

有研究发现[32,33],在开阔水体(如湖泊和海洋)中,DOC和CDOM之间存在显著正相关,两者空间分布类似,可基于CDOM利用遥感技术预估DOC时空分布情况. 但本研究中仅FDOM和DOC显著正相关(表 2),而CDOM分别与FDOM和DOC间均未发现较强相关性(P>0.05,N=18),说明非有色DOM组分在DOM中所占比例较不稳定,DOC时空差异可由FDOM变化来解释,而非CDOM. 与文献报道不同的可能原因:①不同于大型湖泊和海洋,本研究水域较窄,DOM地化反应过程较为集中,水体混合行为影响有限; ②流域内不同土地利用类型较为复杂,尤其人为源输入(例如污水排放)干扰较为严重,因此,CDOM和DOC相关性不高. 同时,该区域水体电导率(EC)和DOC无明显相关性(P>0.05,N=24),说明水体混合属于非保守型混合模式[10],物理稀释和传质扩散对DOM浓度分布有一定贡献,但并非主导因素.

表 2 干流水体中DOM浓度指标相关性 1) Table 2 Correlation among different concentration indices of DOM in the main stream
2.2 干流水体DOM的吸收光谱特征 SUVA254值与DOM芳香性程度呈正相关[18]. 如图 3,渠江汇入干流后,干流水体DOM的SUVA254值升高,而涪江汇入干流后,干流水体DOM的SUVA254值降低. 前者可能与沿岸DOM输入有关,而后者与水体混合关系密切. SUVA260值与DOM的疏水性组分呈正相关关系[19],干流水体各样点SUVA260变化趋势与SUVA254一致,且两者极显著正相关(P<0.01,N=18) (表 3). E2/E3可反映DOM分子量大小[20],其值越小,分子量越大. 结果显示,干流水体DOM的E2/E3值变化趋势与SUVA254、 SUVA260值刚好相反,与后两个指标极显著负相关(P<0.01,N=18)(表 3). 另外,研究发现[21]E3/E4能反映水体DOM腐殖化程度、 芳香性结构等. E3/E4<3.5时,水体DOM以胡敏酸为主; E3/E4>3.5时,以富里酸为主. 干流水体DOM的E3/E4值均大于3.5,表明各采样点水体DOM以富里酸为主,这和Wu等研究结果类似[34].
图 3 干流水体DOM的紫外-可见吸收光谱特征值 Fig. 3 UV-Vis absorption spectra special indices of DOM in the main stream


表 3 干流水体DOM的紫外-可见吸收光谱特征值的相关性 1) Table 3 Correlations among different UV-Vis absorption spectra special indices of DOM in the main stream

2.3 干流水体DOM的荧光光谱特征

三维荧光光谱广泛用于水体DOM的结构和组成的定性分析. 参照文献[34]对水体DOM不同类型荧光峰进行划分,干流水体荧光光谱解析得2类峰:①类腐殖质峰,紫外光区类腐殖质A峰(Ex/Em=230~265/410~480 nm)、 可见光区类腐殖质C峰(Ex/Em=325~370/420~480 nm); 光漂白类腐殖质M峰(Ex/Em=290~325/380~440 nm). ②类蛋白质峰,类色氨酸T峰(Ex/Em=275~285/320~360 nm)和类酪氨酸B峰(Ex/Em=270~280/300~320 nm). 图 4为代表性水样DOM三维荧光光谱图. 干流水体DOM均含有A、 C、 M峰,但未发现B峰. 此外,涪江汇入干流后,J-5、 J-6采样点还发现T峰,其中A峰荧光强度占主导,M、 C、 T峰荧光强度差异不大. Coble[35]认为荧光A、 C峰主要反映水体DOM的陆源特征. 荧光A、 C、 M、 T峰强度沿着水流方向逐渐增加(图 5),渠江、 涪江汇入干流后,均能明显增加干流水体DOM的A、 C、 M强度,同时后者还引入T峰,且前者汇合处干流各样点DOM的荧光峰强度均低于后者,这可能与FDOM浓度有关,A、 C、 M峰与FDOM浓度均达到极显著正相关关系(r均大于0.85,N=18).

图 4 干流代表性水样DOM的三维荧光光谱图 Fig. 4 EEMs of typical DOM samples from the main stream


图 5 干流水体DOM荧光峰强度值 Fig. 5 Fluorescence peak intensity of DOM samples from the main stream

相关性分析表明,A、 C和M峰均表现出极显著正相关(P<0.01,N=18),表明A、 C和M峰可能具有共源性. 在J-5和J-6出现T峰,可能是由受城市影响的涪江水体汇入而产生,这与文献报道类似[14,36]. 但荧光T峰强度仍远小于占主导的荧光A峰,表明类蛋白质组分的贡献有限. 值得注意的是,作为典型的DOM类蛋白质信号,B峰(类酪氨酸)在本研究中并没有发现. 由于B峰所表征的类蛋白组分其降解程度较T峰高[37],由此可推测,在该区域内DOM中类蛋白质组分主要来自于人为输入(例如废水排放),藻类活动和部分有机质在降解初级阶段形成的多肽等物质. 而T峰也仅在J-5~J-6段样本中发现,这可能和上游(J-1~J-4)区类蛋白组分的外源输入和内源产生均相对较少有关.

干流水体DOM荧光光谱特征值见图 6. FI值可表征水体DOM腐殖质来源[23],FI>1.9以自生源为主,FI<1.4以陆源输入为主. 干流水体DOM的FI值均小于1.4,表明水体DOM以陆源为主. 同时,BIX可反映水体DOM自生源贡献[24],其值在0.6~0.7时,主要为陆源输入或受人为影响较大,当BIX值大于1时,主要为生物或细菌等来源. 干流水体DOM的BIX值在0.78~0.80之间,表明水体DOM来源可能受到两种结果的混合影响,其值更接近于陆源,表明陆源输入可能为主要形式.

HIX反映DOM腐殖质含量或腐殖化程度[25,26],当HIX>0.8时,水体DOM具有显著腐殖质特征,其来源主要以陆源为主. 干流水体DOM的HIX值均大于0.8,表明水体DOM来源以陆源为主,有显著的腐殖质特征,这与上文的分析结果一致.

在pH变化不大的情况下,荧光A峰和C峰的荧光强度之比[r(A/C)]可反映DOM来源的差异性[27]. 各采样点水体pH值在7.83~7.91之间,因此采用该指标是可行的. 渠江汇合段干流水体DOM的r(A/C)值大于对应涪江汇合段干流DOM的r(A/C)值,表明涪江、 渠江与干流汇合段水体DOM的来源有一定的差异. 干流区域中,FI,BIX和HIX值之间的差异并不显著(P>0.05),但r(A/C)差异明显(P<0.05)(图 6). J-1~J-4区域,r(A/C)逐渐降低,说明C峰比例不断增加,这可能和沿岸陆源输入有关,而涪江汇入处(J-5)值明显增加. 由于C峰具有较强光化学活性,更易于光解,r(A/C)也常用来评估DOM光降解情况[38]. DOM的光漂白会使得r(A/C)值增大. 通过室内模拟,该区域CDOM日光辐照下光漂白速率常数为0.03~0.04 h-1,最小半衰期为16.58 h[39],但由于J-5区域面积有限,几乎无水体滞留区域,光漂白贡献可能并不明显,可能更多是由于生物降解和水体稀释导致的DOM耗损[30,31].

图 6 干流水体DOM的荧光光谱特征值 Fig. 6 Fluorescence spectra special index of DOM samples from the main stream

综上,水体汇入、 光漂白和生物降解及沿岸DOM输入均会对DOM性质产生影响. 为进一步了解引起DOM变化的相关机制,采用系统聚类法,以所有样本均存在的A、 C、 M荧光峰为特征变量,采样点为个案标记依据,采样点可明显分为两类(图 7). 上游J-1~J-3包括渠江(Q)为A类; 下游J-4~J-6包括涪江(F)为B类.

图 7 DOM样本荧光峰聚类分析 Fig. 7 Cluster analysis of fluorescence peaks from DOM samples

A类区域沿岸土地利用方式较为复杂,包括森林生态系统、 农田生态系统; B类较为单一,以城市为主,人为活动影响较大. 人为排放和水体藻类、 微生物活动会产生类蛋白物质,但在A类区贡献不显著,DOM仍显示出较强的陆源特征,由此可知,在该区域中DOM结构和性质上出现的差异性,更多来自于水体汇合的影响,以及DOM自身地化过程,如生物降解及与底泥、 悬浮颗粒物的吸附[40]; 在B类区,明显的T峰信号出现,表明人为影响导致的类蛋白物质输入是DOM浓度增加的重要原因. 2.4 支流水体DOM特征变化

由于两支流汇入干流的混合模式也为非保守型混合,因此水体稀释/扩散在支流汇入过程中,对DOM浓度分布及特征影响有限,其机制并不能仅用水体混合模式来解释(图 8). 渠江汇入嘉陵江后,DOC降低,CDOM浓度增加; 同时荧光组分[Fn(355)]含量下降. 但DOC和FDOM降低程度并不一致,除水体混合的有限影响外,其他地化过程(例如降解和吸附)也可能导致DOM中荧光组分减少. 对涪江而言,尽管汇合后[Fn(355)]下降,但DOC和CDOM浓度变化并不明显,说明汇入过程中存在非荧光组分的增加,例如沿岸输入、 DOM荧光组分降解成为非荧光物质等[41].

图 8 支流汇合前水体DOM浓度 Fig. 8 Comparison of DOM concentrations from tributaries before and after confluence

渠江、 涪江汇入干流后,前者DOM的SUVA254、 SUVA260值增加,后者降低,而E2/E3的变化趋势刚好相反(图 9),表明渠江为干流水体带来了较多的大分子量疏水性芳香性结构物质,而涪江水体中大分子量疏水性芳香性物质较少,在干流混合作用下,其值明显降低. 两支流汇合前后水体DOM的E3/E4均大于3.5,表明水体DOM以富里酸为主,这与干流水体一致.

图 9 支流汇合前后水体DOM的可见-紫外光谱特征值 Fig. 9 Comparison of UV-Vis spectra special index of DOM samples from tributaries before and after confluence

与渠江交汇前后相比(图 10),涪江交汇前后水体DOM除A、 C、 M峰外,还出现T峰,且荧光A峰强度远大于其余几个荧光峰强度,前者较后者荧光峰强度的差异更大. 涪江汇入后,荧光T峰强度降低,表明干流水体对汇入的高浓度的类蛋白质物质有很好的缓冲作用. 两支流DOM的r(A/C)值为所有采样点中的最大值和最小值,但数值差异较小,表明两支流水体DOM的来源存在一定差异. 两支流水体DOM的FI值均低于1.4,BIX分别为0.76和0.82,HIX均大于0.8(图 11),结果均进一步表明两支流水体DOM来源以陆源输入为主,具有明显类腐殖物质特征. 结合CDOM浓度,涪江由于沿岸城市的人为排放及较高的内源生产力,成为干流中类蛋白组分含量增加的重要原因.

图 10 支流汇合前后水体DOM的荧光峰强度 Fig. 10 Comparison of fluorescence peaks intensity of DOM samples from tributaries before and after confluence


图 11 支流汇合前后水体DOM的荧光特征值 Fig. 11 Comparison of fluorescence spectra special index of DOM samples from tributaries before and after confluence

渠江与嘉陵江交汇处位于郊区,两江沿岸土地利用方式以林地及坡耕地为主,人为活动相对较城市用地少,而森林土壤DOM常含有较高木质素、 C/N比和较大的分子量[13,42],因此,本研究中降雨径流及渗流通过以林地等植被覆盖为主的土地后,为水体带来更多芳香性结构且分子量更高的物质. 涪江与嘉陵江交汇处位于合川城区中心码头处,文峰古镇旁,沿岸以城市用地为主,受人为活动影响较大,可能为水体输入大量油脂、 蛋白质等,芳香性结构较低[43],同时,人为活动产生的生活污水等将造成水体细菌等微生物活动增强[44],而水体类蛋白质荧光峰可反映微生物活性及人为干扰对水体的影响[14],这可能是该区域(J-5~J-6)水体出现荧光T峰、 且DOM浓度较高的重要原因. 2.5 文献对比

和其他研究汇合处水体DOM 特征变化的文献进行对比发现(表 4),大部分研究将原因归结于支流水体性质及其周边环境差异,且主要以周边环境差异为主,包括人为活动、 气候变化、 地理位置和不同土地利用方式等. 支流汇入干流后,干流水体DOM在浓度、 结构和来源特征上均发生变化,这与本研究结果相似.

表 4 文献数据对比河流交汇处水体DOM变化情况 1) Table 4 Comparison of DOM changes of rivers confluence reported in different references

嘉陵江干流水体稀释作用对支流高浓度DOM的输入起到重要缓冲作用,同时,支流高浓度DOM的输入也有效地增加了干流水体DOM浓度. 另一方面,渠江为嘉陵江干流提供了较高芳香性结构和腐殖化程度DOM; 而涪江为干流水体DOM除提供了类腐殖质组分外,还输入了大量类蛋白物质. 支流对干流的这种影响,与文献[8]报道一致.

水生生态系统中,DOM对水体中营养元素、 重金属及有机污染物等的迁移转化行为都能产生重要影响[45],水体交汇处更是环境变化的敏感区域之一,两支流向干流汇入性质不同的DOM后,必将导致水体中各种污染物的环境行为发生相应变化,同时伴随着交汇处水体水流减缓等条件,水体DOM与污染物接触时间可能增加,加大该区域生态环境风险. 因此,研究在该特殊水体区域内,DOM对污染物迁移转化的影响,应是进一步研究的工作重点. 3 结论

(1) 干流水体(嘉陵江)DOM陆源输入特征较为明显,在采样区域的流经过程中,DOM中各浓度指标呈增加趋势,尽管存在DOM耗损,但仍主要以DOM输入为主. 受水体混合、 DOM降解和吸附以及沿岸输入的影响,DOC与CDOM浓度无相关性,该区域采用水色遥感等技术评估DOC空间分布特征的可行性不高.

(2) 整个研究区域的水体混合为非保守混合模式,对DOM地化特征的变化有一定贡献,但并非主导因素. 相比而言,沿岸输入(外源)才是DOM主要来源,同时降解和吸附等地化过程可能是导致该区域DOM特征变化较为复杂的重要原因.

(3) 水体沿岸土地利用类型对DOM有明显影响. 根据DOM特征变化,研究区域可分为两类:一类以沿岸为森林和农田生态系统为主; 另一类以城市用地为主. 两者均显示出较强陆源输入特征; 且后者出现类蛋白组分信号,表明人为活动对水体质量的影响明显.

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