2. 重庆市三峡库区农业面源污染控制工程技术研究中心, 重庆 400716;
3. 重庆市农业资源与环境研究重点实验室, 重庆 400716
2. Chongqing Engineering Research Center for Agricultural Non-point Source Pollution Control in the Three Gorges Reservoir Area, Chongqing 400716, China;
3. Chongqing Key Laboratory of Agricultural Resources and Environment, Chongqing 400716, China
水库环境已被证实是有利于汞活化、 甲基化及生物累积的场所[1],是典型的“汞敏感生态系统”[2]. 研究表明,被淹没的土壤与植物是新建水库水体、 鱼体甲基汞(MMHg)的重要来源[3]. 一方面,被淹没的土壤与植物在腐解的过程中,能主动或被动地将所含MMHg释放到水库环境中[4]; 另一方面,其所释放的无机汞可为甲基化反应提供底物; 此外,植物的腐解使水库底部形成厌氧环境[5],同时释放出大量营养物质,为硫酸盐还原菌等可甲基化细菌提供食物来源,加速无机汞向甲基汞转化的进程[6]. 因此,探讨被淹没土壤和植物中汞的释放与转化特征,无疑是研究“水库汞效应”的重要环节.
三峡水库是我国举世瞩目的特大调节型水库,每年3~8月排水期水位下降,会逐步形成落差为30 m、 面积约440 km2的消落区[7]. 由于此时该区域雨热充沛,消落区会生长出茂密的草本植被,9月~次年2月蓄水期水位上升,消落区植物被淹没. 这一水位调度方式,使三峡水库消落区长期呈现植物生长-淹没分解-再生长的更新过程,并可能会影响到消落区土壤汞的转化与释放,增加区域生态环境汞的风险. 为此,本研究采集了消落区土壤、 植物和水样,采用室内模拟试验,探讨了消落区淹水期土壤、 植物汞向水体释放特征及对鱼体汞富集水平的影响.
1 材料与方法 1.1 试验材料供试土壤、 植物及用水均采自三峡库区腹心地带重庆市忠县石宝寨新政村(N30°25′7.5″,E108°10′5.5″)消落区. 土壤样品经风干、 过筛2 mm、 混匀. 试验前土壤理化性质见表 1. 植物选择消落区优势度最大[8]的稗草(Echinochloa crusgalli),其总汞(THg)、 MMHg含量分别为:10.62 μg ·kg-1、 80.70 ng ·kg-1. 供试用水样取自石宝寨长江干流,其基本性质见表 2. 供试用鱼为斑马鱼(体重0.38 g±0.03 g,体长3.90 cm±0.51 cm),试验前用供试用水驯化30 d,期间,每两天喂食一次(饲料购自三友创美饲料科技有限公司,北京,THg<3.57 ng ·kg-1,MMHg<2.63 ng ·kg-1),喂食量为斑马鱼体重的2%. 试验装置由硼硅玻璃制成,尺寸为L 60 cm×W 30 cm×H 40 cm.
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表 1 供试土壤的基本理化性质 Table 1 Physicochemical properties of soils used in this research |
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表 2 水样基本性质 Table 2 Properties of water in the Yangtze River |
试验设置3个处理,分别为A:对照,仅加江水; B:土样; C:土样+稗草. 试验时于B、 C玻璃缸底部各加入6.5 kg土样,土层厚度约5 cm. 然后向各处理鱼缸缓慢注入40 L水样,静置7 d. 再向C处理分别加入150 g稗草鲜样,并在各处理土壤上方2 cm处,固定一张Teflon网,以防止鱼与土壤直接接触. 最后各放入20尾大小相近的斑马鱼,连续进行了3周的培养试验. 每个处理均设3个重复,每个样品重复测定3次. 室温控制在14℃±2℃条件下,试验期间不对斑马鱼进行喂食.
1.3 样品采集及分析于试验开始的第1、 7、 14及21 d采集水样及土样. 用Teflon管虹吸采集150 mL水样于硼硅玻璃瓶中,酸化至0.5%,冷藏保存. 用自制的管状采样器在玻璃缸四周及中间多点采集土样于自封袋中,冻干机冻干、 磨细并过0.149 mm筛,冷冻保存. 在第7及21 d每个处理各采集鱼样5尾,即时在冰袋上解剖,分头部、 内脏及肌肉于自封袋中,冻干机冻干、 磨细并冷冻保存.
水样THg、 MMHg的检测方法分别按照USA EPA Method 1631 [9]、 Method 1630 [10]进行检测. 利用气相色谱-冷原子荧光法(GC-CVAFS)测定土壤[11]及鱼体[12]中MMHg含量,DMA-80固体进样自动测汞仪直接测定土壤及鱼样中THg含量. DOC的测定:取水样过0.45μm后,用全自动TOC分析仪(Sievers InnovOx,GE,USA)测定. 试验期间定期测定水体中pH(Sartorius PT-10,German)、 溶解氧DO(YSI550A,USA).
1.4 质量控制及数据处理试验所使用的玻璃器皿在使用前均用硝酸(25%,体积比)浸泡24 h以上,超纯水清洗后经马弗炉500℃灼烧30 min,在洁净无汞的环境下冷却后使用. 分析过程中采用空白试验、 标准物质测定、 平行样控制及加标回收率进行质量控制. 土样标准物质为GBW07405(GSS-5),鱼样标准参考物质为干鱼样NRCC-TORT-2. 本试验对于固体样品、 水样总汞测定加标回收率分别为93%~112%、 88%~109%; MMHg测定加标回收率则分别为86%~109%、 89%~113%.
数据分析与作图分别使用软件SPSS 16.0与Origin 8.1.
2 结果与讨论 2.1 水环境参数的变化由表 3可见,淹水后,处理A中pH无明显变化. 处理B和C 中pH在淹水初期明显下降,且低于处理A,与土壤pH趋于一致,7 d后测得的pH值变化不大. 水体中DO含量均随时间的延长而降低,呈处理C[13].
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表 3 试验期间水体中pH值、 DO、 DOC浓度变化 Table 3 Variations of pH,DO and DOC in the water during the experiment |
由图 1(a)可见,淹水后处理B与C土壤中总汞(THg)含量均降低,说明土壤淹水后,土壤汞会向水体释放. 但淹水7 d后,系统中土壤THg含量变化不明显,基本达到平衡. 土壤被淹没后所释放的汞只占其THg量的一小部分[14],本研究淹水21 d后,处理B与C土壤THg含量分别下降了18.49%、 15.62%.
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图 1 土壤及水体中THg的变化趋势 Fig. 1 Variations of THg levels in soil and water |
处理A水体中THg浓度随淹水时间延长而逐渐下降,而处理B与C由于有土壤、 植物汞释放的补充,水体THg浓度总体明显升高,并呈先增后减的趋势[图 1(b)],其中在第7 d测得处理B、 C水体THg浓度最高,分别为17.90 ng ·L-1、 25.78 ng ·L-1,之后各处理THg浓度均降低,这可能与THg向大气释放、 被鱼体富集及土壤再吸附有关. 由图 1(b)还可看出,处理B、 C水体THg浓度远高于对照(处理A),而添加植物的处理C水体THg浓度明显高于处理B,这一现象进一步证明了土壤、 植物淹水后能迅速释放THg[15,16]. 在淹水试验后的第21 d,处理B与C的水体THg浓度分别是A的2.62、 3.07倍,表明三峡水库消落区土壤、 植物是库区水体THg的一个重要来源.
2.3 甲基汞的释放特征由图 2(a)可见,处理B与C中土壤MMHg含量随时间变化均明显升高,在淹水的一周内增加较为明显,这是由于淹水厌氧环境有利于汞的微生物甲基化,进而提高土壤中MMHg含量[17]. 在淹水21 d后,处理B与C的MMHg含量分别为956.63 ng ·kg-1、 1139.79 ng ·kg-1,是第1 d的2.20、 2.69倍,表明了库区消落区土壤淹水后利于土壤中MMHg的产生. 淹水初期,处理B与C土壤中MMHg含量无明显差异(P>0.05),但试验14 d后,添加植物的处理C土壤MMHg含量明显高于处理B,说明随着时间的延长,淹没植物分解释放的DOC、 营养元素等对土壤MMHg的产生有影响.
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图 2 土壤与水体MMHg的含量变化 Fig. 2 Variations of MMHg in soil and water |
水体中MMHg变化见图 2(b),与对照相比,处理B与C中MMHg浓度总体均明显上升. 其中,处理B中MMHg浓度呈先增后减的趋势,在第14 d测定值最高,为1.12 ng ·L-1,随时间延长,MMHg浓度下降,可能与水体去甲基化作用、 鱼体富集及土壤再吸附等有关. 处理C与B水体中MMHg浓度在前14 d无明显差异(P>0.05),但在淹水21 d后,达1.89 ng ·L-1,是B的2.52倍. 这是由于随着时间的延长,处理C添加的植物腐解使水体中DOC含量上升、 DO下降(表 3),利于汞的甲基化,从而提高水体中MMHg浓度.
淹水试验21 d后,处理B与C水体中MMHg浓度分别是A的4.67、 11.79倍,处理B与C水体的MMHg浓度变化与土壤中MMHg含量变化呈极显著相关(P<0.01),表明了水中MMHg主要来源于土壤. 此外,处理B与C土壤中MMHg占THg的百分比(MMHg ∶THg)呈明显上升趋势[图 3(a)],第21 d土壤中MMHg ∶THg分别是第1 d的2.70、 3.04倍. 有研究指出[18],被淹没土壤中MMHg含量以及MMHg占THg的比例均会显著上升. 处理B水体中MMHg ∶THg呈先降后升再降的趋势[图 3(b)],而C中在前14 d无明显差异,但第21 d时其MMHg ∶THg最高,达13.84%,是B的2.16倍,说明随淹水时间延长,植物改变原水环境参数能一定程度提高水体中MMHg ∶THg.
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图 3 土壤与水体MMHg ∶THg百分比变化 Fig. 3 Variations of the percentage of MMHg in THg in soil and water |
试验21 d后,各处理鱼体平均体重为0.48 g±0.13 g,平均体长为4.20 cm±0.11 cm. 随淹水时间延长,处理A头部、 内脏和肌肉这3个部位THg含量基本稳定,但处理B与C总体呈明显上升趋势,并表现为C>B>A(图 4). 21 d时处理B头部、 内脏及肌肉中THg含量分别比初始的增加32.77%、 40.56%与42.21%,而C的则增加了49.09%、 31.98%与50.51%,,且与土壤和水体中THg呈显著正相关(P<0.01),表明淹没土壤与植物向水体释汞是鱼体THg增加的直接来源.
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图 4 斑马鱼体中的THg含量 Fig. 4 Variations of THg levels in zebrafish |
由图 5可见,随着时间的延长,各处理鱼体MMHg含量均呈上升趋势. 第21 d时,各处理鱼体头部、 内脏及肌肉中MMHg含量分别增加了0.40~2.52、 0.12~1.58、 0.69~2.30倍. 可见,斑马鱼的3个部位均有MMHg富集效应,其中,头部与肌肉中MMHg的积累最为明显. 以往的研究也表明,鱼体对MMHg富集有累积迅速、 排除缓慢的特征[19].
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图 5 斑马鱼体中MMHg含量及MMHg ∶THg的变化趋势 Fig. 5 Variations of MMHg levels and the percentage of MMHg in THg in zebrafish |
各处理斑马鱼头部均呈现较明显的MMHg净累积,其原因可能是,MMHg能通过非Na+依赖型中性氨基酸载体(系统L)顺利进入血脑屏障[20],大量累积在脑部[21]. 另一方面,腮部是水及离子交换的主要场所[19],可能存在无机汞的甲基化[22]. 本试验21 d后,处理C的MMHg积累速率比B中高,两者分别为1.33 μg ·(kg ·d)-1、 0.37 μg ·(kg ·d)-1,且均高于处理A. 说明淹没植物及土壤有增加鱼体中MMHg含量的风险.
作为解毒及贮存器官,肝脏可能因参与到污染物代谢中而富集大量的污染物[21]. 在21 d时,处理C中的鱼体内脏富集MMHg最明显,分别增加22.52 μg ·kg-1. 但整体上各处理内脏的MMHg ∶THg变化不大,这可能与肝脏中的解毒过程有关,肝脏能将MMHg去甲基化转化成Hg(Ⅱ)[23],也能通过血液运输将MMHg贮存于肌肉中[24].
肌肉中甲基汞含量变化与头部类似,在第7 d,处理B鱼体肌肉中MMHg呈明显的上升趋势,这与水体中的MMHg变化趋势相吻合. 第21 d时,处理C肌肉中MMHg含量最高(47.50 μg ·kg-1). 与无机汞相比,MMHg能稳定穿过生物膜,积累在肌肉内[2, 25, 26]. 且MMHg主要以半胱氨酸-硫醇复合物存在于肌肉中[27],其半衰期为400 d左右[28]. 本试验过程中未添加食物,处理B、 C斑马鱼肌肉中MMHg含量与土壤、 水体MMHg均呈显著正相关(P<0.05),表明斑马鱼体MMHg主要来自试验系统中土壤、 植物释放.
通常鱼体富集MMHg有两种途径,一是从水体吸入,二是通过食物摄取. 研究发现,鱼体直接从水体吸入的MMHg量十分有限[29],其MMHg主要来源于摄入食物[30]. 处理A中鱼体的头部、 内脏及肌肉三部分的MMHg含量都略有上升,说明了当没有食物来源时,从水体吸入会变成鱼体富集MMHg的主要途径. 对于同一水体,鱼体汞一般比水体汞高6个数量级[31],水库被淹没后,水体中MMHg浓度的微弱增加可能会导致鱼体MMHg的显著升高[14]. 试验21 d中,添加土壤处理的鱼体头部、 内脏及肌肉MMHg增加的含量分别是对照的1.75~6.25、 3.53~8.38、 2.22~3.36倍; 添加稗草处理的分别是未添加的3.57、 2.37、 1.52倍,进一步验证了淹没土壤和植物是水库鱼体MMHg增加的重要来源.
3 结论三峡水库消落区淹没土壤、 植物是水体汞升高的重要来源; 淹没土壤与植物向水体释汞过程会明显增加鱼体中THg、 MMHg含量; 淹没植物的腐解,一方面可释放所含的汞,增加水体汞含量,同时,所释放的DOC等营养物质可促进汞的甲基化,提高生态风险.
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