环境科学  2014, Vol. 35 Issue (4): 1597-1601   PDF    
水中细菌内毒素污染特性及检测方法研究进展
张灿1, 刘文君2 , 张明露3, 田芳2,5, 杨毅4, 安代志1    
1. 军事医学科学院疾病预防控制所,北京 100071;
2. 清华大学环境学院,北京 100084;
3. 北京工商大学食品学院,北京 100048;
4. 解放军总参谋部卫生防疫队,北京 100082;
5. 南京工程学院环境工程学院,南京 211167
摘要:细菌内毒素是革兰氏阴性菌和某些蓝藻细胞壁的脂多糖复合物,主要由菌体死亡解体后释放,是常见的外源性致热原,具有强免疫刺激能力,与人类多种疾病密切相关.内毒素分子的耐受力好,耐热性强,不易被常规方法去除.饮用水和水环境中的内毒素可通过多种暴露途径导致机体潜在的健康风险,成为近年来研究的热点.本文概述了细菌内毒素的理化特性和生物活性,综述了细菌内毒素多种检测方法的研究进展,并对细菌内毒素的法定检测方法——鲎试验用于检测水体环境样品的干扰问题和排除方法进行分析.
关键词饮用水     水环境     内毒素     脂多糖     鲎试验     热原检测    
Review on Characteristics and Detecting Assay of Bacterial Endotoxin Contamination in Water Environment
ZHANG Can1, LIU Wen-jun2 , ZHANG Ming-lu3, TIAN Fang2,5, YANG Yi4, AN Dai-zhi1    
1. Institute of Disease Control and Prevention, Academy of Military Medical Sciences, Beijing 100071, China;
2. School of Environment, Tsinghua University, Beijing 100084, China;
3. School of Food and Chemical Engineering, Beijing Technology and Business University, Beijing 100048, China;
4. Pubic Hygiene and Antiepidemic Section, General Staff Headquarters of PLA, Beijing 100082, China;
5. School of Environmental Engineering, Nanjing Institute of Technology, Nanjing 211167, China
Abstract: Endotoxins, also known as lipopolysaccharide complexes, are anchored in the outer membrane cell wall of most Gram-negative bacteria and some cyanobacteria. They are continuously released to environment during cell decay. Being common pyrogens and highly immunogenic molecules, endotoxins are related to many human diseases. Due to the tolerances and thermo-stability of endotoxin molecules, they were hard to be removed by common methods. The health risk caused by the endotoxin contamination in drinking water and water environment by various exposure pathways have attracted more and more attention in recent years. In this paper, the physical and chemical properties, biological activities and detection assay of the endotoxin contamination were reviewed, and interfere factors of the main assay, the LAL/TAL (Limulus amebocyte lysate/Tachypleus amebocyte lysate) assay, for detecting endotoxin in water sample were investigated, and the development tendency of the endotoxin detection assay was analyzed.
Key words: drinking water     water environment     endotoxin     lipopolysaccharide     LAL/TAL assay     pyrogen detection    

细菌内毒素,又称热原,是革兰氏阴性菌和部分蓝藻细胞壁的脂多糖复合物,主要由菌体死亡解体释放.内毒素是常见的外源性致热原,属于强免疫刺激因子,进入机体后能导致严重的炎症级联反应,引起一系列的病理生理反应.机体对内毒素反应极为敏感,Elin等[1]报道将0.1~0.5 ng ·kg-1内毒素进行体内注射即可引起人体发热.为了保障患者安全,与血液接触的药品和医疗器械都需要严格控制内毒素水平,与血液接触的水如透析用水、 制药用水等的内毒素污染也受到关注和严格控制[2].

近年来,饮用水和水环境的内毒素所致健康风险开始受到关注.当水体环境发生微生物增殖或者蓝藻暴发时,菌体死亡释放的内毒素可通过血液、 呼吸、 胃肠等暴露途径引发潜在的健康风险.虽然目前国内外尚未将细菌内毒素列入饮用水和再生水水质标准,但是近年来国外有关地表水、 地下水、 饮用水、 再生水和污水处理厂出水等内毒素污染的研究逐年增多.如日本淀川的内毒素活性为311~2430 EU ·mL-1 [3]; 加拿大蒙特利尔的13个地表水源的内毒素活性为32~1188 EU ·mL-1 [4]; 芬兰的水源在蓝藻暴发后内毒素活性达到20~38000 EU ·mL-1 [5]; 科威特的自来水(海水淡化)内毒素活性为2.4~33.8 EU ·mL-1 [6]. 2013年,笔者调查北京市城区12个管网末梢水的内毒素范围为0.1~9.2 EU ·mL-1, 市售的9种瓶装饮用水内毒素范围为<0.004~16.0 EU ·mL-1; 自来水厂混凝沉淀等传统工艺对内毒素去除率达63%,而活性炭吸附池和氯消毒工艺都促进了内毒素的释放[7, 8].相比之下,饮用水和水环境内毒素污染研究的国内报道较少,应该得到更多的关注. 1 细菌内毒素的特性

内毒素具有广泛生物活性,与人类多种疾病相关.内毒素进入机体后,并非直接引起机体反应,而是与机体靶细胞作用诱导产生一系列炎症介质和细胞因子,如白细胞介素-1(interleukin-1, IL-1)、 肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor, TNF)、 干扰素(interferon, IFN)等.这些细胞因子相互诱导和调节,导致更多的炎症细胞因子释放,形成一种“瀑布效应”的恶性循环,迅速活化不同组织器官的细胞,从而引发机体严重的病理生理反应,导致机体代谢、 激素水平和神经内分泌的改变,造成细胞功能异常,导致出现发热、 低血压、 心动过速、 休克、 多器官功能衰竭甚至死亡等.此外,细菌内毒素具有极强的耐热性(100℃高温下加热1 h仍无法灭活),160℃条件下加热2~4 h,或用强碱、 强酸或强氧化剂加温煮沸30 min才能破坏它的生物活性,因此常规消毒和处理措施不易将其去除.

细菌内毒素主要由O—特异性链、 核心多糖、 类脂A三部分组成(见图1).类脂A由氨基葡萄糖、 磷酸和脂肪酸组成,是脂多糖不可缺少的组成部分,几乎参与内毒素介导的所有生物活性.类脂A的结构差异会导致内毒素生物活性的不同.不同种属细菌的类脂A部分的脂肪酸排列不同,也会导致内毒素活性的差异; 同一种属的不同菌株的细菌,其内毒素的类脂A所含脂肪酸数目及种类不同; 处于不同生长期的细菌,其类脂A所含的脂肪酸种类及数目可能不同,这都会导致内毒素活性有所差异.来源于革兰氏阴性菌的内毒素与蓝藻内毒素具有结构差异,其生物活性比蓝藻内毒素高10倍以上[5,9,10].70年代以前,国内外都采用质量单位纳克(ng)来计量内毒素,但是这种计量方法并不科学.因为相同质量的内毒素,由于菌株来源不同,提取方法不同以及所加赋形剂不同,因此其生物活性相差很大. 80年代以后内毒素计量单位改为活性单位(endotoxin units, EU),目前国内外对EU与ng的转换系数并未统一,一般按1 ng=5~10 EU换算.

图1 内毒素的典型结构示意 [11] Fig.1 Schematic diagram of endotoxin structure
2 内毒素检测方法的研究进展 2.1 最早的内毒素检测方法——家兔法

家兔法是最原始的内毒素检测方法,1923年由Seibert首次提出,1942年美国药典首先将家兔法作为药品的热原检查方法,1953年中国药典开始收录该方法[12].家兔法是将一定剂量的待测样品经静脉途径注入家兔体内,在规定的时间内观察家兔体温升高情况,以判定样品中所含内毒素的限量是否符合规定.家兔法能够反映出热原物质引起的哺乳动物升温过程,既能进行内毒素的检测,也能进行非内毒素致热原的检测.由于家兔的种属差异和个体差异大,家兔法检测结果重复性差,而且实验价格昂贵、 时间长.目前鲎试验已经取代家兔法成为法定的内毒素检查方法,但是家兔法仍是药典认可的内毒素检测方法,对鲎试验不能检测的样品仍需要以家兔法检测. 2.2 现行的法定内毒素检测方法——鲎试验

鲎试验是目前药典规定的内毒素检测方法.鲎又称马蹄蟹,是栖生于海洋中的一种古老的节肢动物,已存在大约3.5亿年,有“活化石”之称.1963~1964年Levin等[13]首次对细菌引起鲎血凝聚的机制进行报道,认为鲎血中阿米巴细胞与内毒素发生一系列酶促反应导致凝集反应.内毒素可以启动鲎试剂中的C因子使其成为活化C因子,活化C因子继而启动B因子使其成为活化B因子,活化的B因子再激活凝固酶原,使凝固酶原活化成凝固酶; 凝固酶能切断凝固蛋白原中特定的精氨肽链,形成凝固蛋白产生凝胶(见图2).鲎试验中最重要的试剂是鲎试剂,是鲎血的阿米巴细胞(即变形细胞)溶解物的冷冻干燥品.目前常用的鲎试剂有美洲鲎试剂(Limulus amebocyte lysate,LAL)和东方鲎试剂(Tachypleus amebocyte lysate,TAL)等,我国多采用TAL试剂,其反应机制基本相同.目前鲎试验主要有3种方法:凝胶法、 浊度法和显色法,其机制如图2所示.凝胶法是基于判断凝胶形成的检测方法,较快速,经济方便,但只能用于定性和半定量检测.浊度法是采用分光光度计检测凝胶形成过程中浊度的变化.显色法是利用凝固酶水解显色底物产生的显色基团,使吸光度发生变化.浊度法和显色法两种又统称光度法,根据检测过程的不同分为终点浊度法/动态浊度法和终点比色法/动态比色法.与凝胶法相比,浊度法和显色法所得数据更精确,可以用于定量检测,而且快速、 简便、 重复性好、 灵敏度高、 易推广和标准化、 能进行大量样品的分析.

图2 鲎试剂与内毒素的反应机制 Fig.2 Mechanism of reaction between endotoxin and LAL/TAL reagent

鲎试验的灵敏度远远高于家兔法,操作简单、 成本低廉、 标准化程度高、 重复性好.自从1980年《美国药典》第20版收录鲎试验以来,各国药典等相继收录该方法.1993年中国药典第二增补本开始收录鲎试验用于检测内毒素,2005年版中国药典正式将光度法(浊度法和显色法)收录作为内毒素的定量测试方法[14]. 2.3 气相色谱-质谱检测内毒素分子的3-羟基脂肪酸

Binding等[15]和Saraf等[16]利用气相色谱-质谱(gas chromatography-mass spectrometry, GC-MS)检测内毒素分子的3-羟基脂肪酸来表征内毒素含量,但是检测结果显示3-羟基脂肪酸的含量与内毒素的生物活性无均一的关联性.由于3-羟基脂肪酸是内毒素分子中类脂A的一个典型结构,并非活性基团,因此GC-MS检测内毒素分子的3-羟基脂肪酸不能反映内毒素生物学活性,因此限制了该方法的进一步应用. 2.4 凝胶过滤色谱-质谱检测内毒素分子的KDO成分

内毒素的核心多糖含有特殊的酮糖(3-脱氧-D-甘露糖-辛酮糖,KDO),KDO成分与类脂A的氨基葡萄糖连接.Rybka等[17]利用凝胶过滤色谱-质谱(gel permeation chromatography-mass spectrometry, GLC-MS)检测内毒素的KDO成分,结果表明该方法适用于测定人体体液样品,但对于含有多种细菌的实际环境样品,该方法却不能准确检测内毒素水平.KDO成分是内毒素分子中核心多糖的一个典型结构,不是活性基团,因此GLC-MS检测内毒素的KDO成分也不能准确表征内毒素生物学活性. 2.5 重组C因子方法 在鲎试验中,内毒素激活C因子并启动整个鲎血的血凝级联系统,其中C因子是对内毒素敏感的丝氨酸蛋白酶.目前有研究采用重组C因子方法进行内毒素检测[18],重组C因子方法克服了鲎试剂的生产批次不同而导致的检测结果差异.重组C因子方法不涉及引起鲎试验中旁路反应的G因子,避免因葡聚糖产生假阳性结果. Alwis等[19]采用重组C因子方法对居室空气内毒素进行检测,与鲎试验的检测结果相比,两种方法的相关系数为0.86. Gehr等[4]采用重组C因子和鲎试验两种方法检测相同水样,发现此两种检测方法虽然机制相似,但是检测结果差异较大,相关系数为0.137~0.966. 2.6 酶联免疫测定法

目前报道的基于酶联免疫测定法(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA方法)的内毒素检测方法,主要有以下两种方法:一种是基于ELISA方法与鲎试验的结合,用酶联免疫吸附的方法以抗凝固酶原的单克隆抗体,测定经鲎试验后样品中残存的凝固酶原量,得到内毒素与吸附呈反比的曲线,通过标准曲线检测样品内毒素[20].另一种是基于内毒素的致热原理,即外加内毒素刺激巨噬细胞后产生内热原物质,如肿瘤坏死因子(TNF)和白细胞介素1(IL-1)等,采用ELISA方法对内毒素进行定量测定[21].从目前研究看,基于ELISA方法的内毒素检测还有待于进一步提高精确度和加强验证. 2.7 生物传感器

国内外有采用生物传感器用于内毒素检测的报道,较多见的是压电生物传感器.Muramatsu等[22]根据内毒素与鲎试剂发生凝集反应后溶液黏度的变化,建立一种基于镀钯9MHz AT切割石英晶体的压电传感器,最低检测限能达到1 pg ·mL-1.熊兴良等[23]研制了一种基于石英晶体的液体阻尼效应压电生物传感器,该传感器能灵敏地响应内毒素与LAL凝胶反应过程引起液体流变学性质(黏度和密度)变化,虽然检测限和检测时间有较大的提高,但样品的黏滞度、 浑浊度和密度对结果仍有影响. 3 水体环境样品内毒素检测的干扰因素分析

目前,现有研究中水体环境样品的内毒素检测大多数都采用鲎试验.鲎试验属于生物毒性测试方法,不是精确的分析方法.一些非内毒素分子也能引起相似的凝集现象,如β-葡聚糖及其类似物存在着G因子反应旁路(如图2),使鲎试剂发生凝聚反应,引起假阳性结果.由于鲎试验的本质是一系列的酶促反应,影响酶促反应的因素如络合物、 生化试剂、 抗生素、 消毒剂、 某些无机离子等均会干扰鲎试验中凝胶的形成.此外,鲎试剂属于生物试剂,样品中的化学物质、 蛋白和其他试剂也容易引起鲎试剂的变性.能够引起内毒素分子吸附、 屏蔽、 聚集作用的因素会引起鲎试验的严重干扰,例如高浓度的阴阳离子、 特异性离子、 C因子(即丝氨酸蛋白)的抑制剂等.在光度法鲎试验中,可能影响光密度值的因素,如某些溶液的色度或者浊度较高等,都会干扰检测结果.药典规定,只有收录的药品和医疗器械才可以采用鲎试验检测内毒素,如美国药典24版共收录579种药品适于细菌内毒素检查,中国药典2005版规定168个品种适合以鲎试验进行内毒素检测.

为了确定样品的干扰情况和保证数据可靠性,鲎试验之前必须先做样品的干扰试验,以加标回收率来分析样品对鲎试验的抑制/增强效果[14].中国药典2005版规定鲎试验的加标回收率控制在50%~200%之间[14].目前,最常用的去除干扰方法是对样品多倍稀释,但是对于干扰严重的样品,多倍稀释后内毒素活性可能会极低,甚至不能达到最低检测限,这样仍难以保证合适的加标回收率.由于内毒素分子的耐热性强、 不易挥发,也可以采取氮吹或加热的方法对挥发性、 不耐热的干扰成分进行排除.采用鲎试验检测组分复杂的水环境样品,会有更多的干扰因素.例如,水样的pH值严重干扰鲎试验,样品必须保证在pH 6.0~8.0范围内进行,采用TAL试剂时最好将样品调节pH 6.5~7.5[24].对于过酸或者过碱的水样,需要采用多倍稀释或者无热原缓冲溶液调节pH值.水样中添加高浓度的盐类物质,也会干扰鲎试验的准确性,主要原因是蛋白质的盐析作用破坏了鲎试剂的酶活性,降低酶促反应速度; 其次,盐类引起水样过酸过碱也会干扰鲎试验的检测.水中盐类浓度高时,必须多倍稀释后才能进行鲎试验,如果仍达不到合格的回收率,则不适于进行内毒素检测.此外,水样的添加剂或者使用的试验器材可能会影响鲎试验结果,例如水中的螯合剂EDTA可以干扰鲎试验的凝集反应; 滤纸或者过滤材料中含有葡聚糖,会引起鲎试验的旁路反应,从而引起检测结果的假阳性. 4 结论

随着人们对内毒素所致健康风险的关注,内毒素的研究领域已由原来的生物医药领域逐渐向外扩展.近年来,饮用水和水环境领域的内毒素污染已经成为国外研究的热点.鲎试验是药典规定的内毒素检测方法,被称为现行内毒素检测的“金标准”,但是鲎试验属于生物毒性测试方法,复杂样品尤其是环境样品中会存在多种干扰因素.此外,鲎试剂的制备需要捕杀大量鲎,随着人类对鲎的保护越来越重视,鲎资源的利用也逐渐受到限制.目前,随着现代分析测试技术发展和交融,出现了多种新型的内毒素检测方法,但是都没有得到认可,需要进一步改进和验证.因此,开发新型理化检测技术替代传统的鲎试验,并探索将之用于检测复杂组分的样品(如实际水体样品),是内毒素检测方法研究的重要任务,也是水环境微生物学安全研究的重要内容.

参考文献
[1] Elin R J, Wolff S M, McAdam K P W J, et al. Properties of reference Escherichia coli endotoxin and its phthalylated derivative in humans[J]. The Journal of Infectious Diseases, 1981, 144 (4): 329-336.
[2] Hindman S H, Carson L A, Favero M S, et al. Pyrogenic reactions during haemodialysis caused by extramural endotoxin[J]. The Lancet, 1975, 306 (7938): 732-734.
[3] Ohkouchi Y, Ishikawa S, Takahashi K, et al. Factors associated with endotoxin fluctuation in aquatic environment and characterization of endotoxin removal in water treatment process[J]. Environmental Engineering Research, 2007, 44 : 247-254.
[4] Gehr R, Uribe S P, Baptista I F D, et al. Concentrations of endotoxins in waters around the island of Montreal, and treatment options[J]. Water Quality Research Journal of Canada, 2008, 43 (4): 291-303.
[5] Rapala J, Lahti K, Räsänen L A, et al. Endotoxins associated with cyanobacteria and their removal during drinking water treatment[J]. Water Research, 2002, 36 (10): 2627-2635.
[6] Abdulraheem A, Mustafa S, Al-Saffar N, et al. Detection of bacterial endotoxin in drinking tap and bottled water in Kuwait[J]. Environmental Monitoring and Assessment, 2012, 184 (12): 7323-7328.
[7] 张灿, 刘文君, 张明露, 等. 城市生活饮用水和瓶装饮用水的细菌内毒素活性调查[J]. 中国给水排水, 2013, 29 (13): 47-52.
[8] Zhang C, Liu W J, Sun W, et al. Endotoxin contamination and control in surface water sources and a drinking water treatment plant in Beijing, China[J]. Water Research, 2013, 47 (11): 3591-3599.
[9] Anderson W B, Slawson R M, Mayfield C I. A review of drinking-water-associated endotoxin, including potential routes of human exposure[J]. Canadian Journal of Microbiology, 2002, 48 (7): 567-587.
[10] Keleti G, Sykora J L. Production and properties of cyanobacterial endotoxins[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1982, 43 (1): 104-109.
[11] Parikh S J, Chorover J. Infrared spectroscopy studies of cation effects on lipopolysaccharides in aqueous solution[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2007, 55 (2): 241-250.
[12] 杨忠思, 吴振军, 杜滨. 热原和细菌内毒素检查研究进展[J]. 医学综述, 2005, 11 (2): 142-144.
[13] Levin J, Bang F B. Clottable protein in Limulus; its localization and kinetics of its coagulation by endotoxin[J]. Thrombosis et Diathesis Haemorrhagica, 1968, 19 (1): 186-197.
[14] 中国国家药典委员会, 中华人民共和国药典[S]. vol(Ⅱ). 北京: 中国医药科技出版社, 2005.
[15] Binding N, Jaschinski S, Werlich S, et al. Quantification of bacterial lipopolysaccharides (endotoxin) by GC-MS determination of 3-hydroxy fatty acids[J]. Journal of Environmental Monitoring, 2004, 6 (1): 65-70.
[16] Saraf A, Larsson L, Burge H, et al. Quantification of ergosterol and 3-hydroxy fatty acids in settled house dust by gas chromatography-mass spectrometry: comparison with fungal culture and determination of endotoxin by a Limulus amebocyte lysate assay[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1997, 63 (7): 2554-2559.
[17] Rybka J, Gamian A. Determination of endotoxin by the measurement of the acetylated methyl glycoside derivative of Kdo with gas–liquid chromatography-mass spectrometry[J]. Journal of Microbiological Methods, 2006, 64 (2): 171-184.
[18] Ding J L, Ho B. A new era in pyrogen testing[J]. Trends in Biotechnology, 2001, 19 (8): 277-281.
[19] Alwis K U, Milton D K. Recombinant factor C assay for measuring endotoxin in house dust: Comparison with LAL, and (1 3)-β-D-glucans[J]. American Journal of Industrial Medicine, 2006, 49 (4): 296-300.
[20] Zhang G H, Baek L, Koeh C. New microassay for quantitation of endotoxin using Limulus ameboeyte lysate combined with enzyme-linked immunosorbent assay [J]. Journal of Clinical Microbiology, 1988, 26 (8): 1464-1470.
[21] 徐修礼, 薛采芳, 于文彬, 等. 双抗体夹心ELISA定量检测内毒素的方法学研究[J]. 细胞与分子免疫学杂志, 2002, 18 (2): 175-183.
[22] Muramatsu H, Suda M, Ataka T. Piezoelectric resonator as a chemical and biochemical sensing device[J]. Sensors and Actuators A: Physica1, 1990, 21 (1-3): 362-368.
[23] 熊兴良, 王翔, 蔡绍皙. 一种检测低内毒素浓度的传感器[J]. 生物医学工程学杂志, 2005, 22 (5): 1040-1044.
[24] 高国政, 颜锦. pH值影响细菌内毒素测定的实验室研究[J]. 中国药学杂志, 1998, 33 (3): 162-165.